Leukocyttælling

Tællemetoden i kameraet. Udtagning og fortynding af blod produceret ved rørmetoden. 0,4 ml fortyndingsvæske og 0,02 ml kapillærblod indføres i røret (fortrinsvis Vidalevskaya). Den resulterende fortynding anses praktisk talt for at være 1:20. En 3-5% opløsning af eddikesyre tonet med methylenblåt anvendes sædvanligvis som fortyndingsmiddel (eddikesyre lyses erythrocytter, methylenblå pletter kernerne af leukocytter). Før påfyldning af kammeret Goryaeva rør med fortyndet blod rystes grundigt. Kammeret er fyldt på samme måde som for røde blodlegemer.

Leukocytter er meget mindre end erythrocytter (1-2 pr. Store kvadrat), derfor er der for nøjagtighed foretaget tællinger i 100 store firkanter (ugraderet). Beregning: 100 store firkanter (1600 små) tælles en leukocyt.
Husk at mængden af ​​en lille firkant er 1/4000 mm3, og blodet fortyndes 20 gange, antallet af leukocytter i 1 μl blod beregnes: 4000 20 og divideret med 1600 = a x 1/2. For at opnå det faktiske indhold af leukocytter i 1 μl blod er det tilstrækkeligt at dividere i det halve antal opnået i beregningen og tilføje 2 nuller. Den gennemsnitlige metodefejl er ± 7%.

Mere præcis (2-3% fejl) og perfekt er antallet af leukocytter ved hjælp af elektroniske enheder. Tællingen af ​​leukocytter i partikeltællere udføres ifølge samme princip som erythrocytter. Forblod fortyndes og blandes med eventuelle reagenslysering af røde blodlegemer. I "Technicon" autoanalyseren anvendes en opløsning af eddikesyre som sådan i "Culter" og "Celloskop" -enhederne - saponin eller sapoglobin, der tilsættes fortyndet (1: 500, 1: 700) i isotonisk natriumchloridopløsning (6 dråber pr. 20 ml fortynding).

Blodlegococyttælling udføres i farvede perifere blodudsmidninger.
Det er bedre at tælle på det tyndeste punkt tæt ved smørets ende, mindst 200 celler (undtagen udtalt leukopeni), og derefter udlede procentdelen af ​​visse typer af hvide blodlegemer. Tælling anbefales i samme rækkefølge: Halvdelen af ​​cellerne skal tælles øverst, halvt i bunden af ​​slagtilfælde uden at gå til selve kanten og midt, zigzagging (3-4 synsfelt langs slagtilfælde, 3-4 felter vinkelret på midten af ​​slagtilfælde, derefter 3-4 felter til siden parallelt med kanten, igen vinkelret opad og så videre til den ene side).

Fremstilling af udstrygninger. Nøje vasket og fedtet glas (dens kant) rører en bloddråbe på injektionsstedet. Smøre gør slibeglas, sæt den i en vinkel på 45 ° til glideren foran dråben. Efter at have bragt glasset til denne dråbe, venter de, indtil blodet spredes langs kanten, så med en hurtig let bevægelse udfører de slibeglasset fremad og tager det ikke væk fra motivet, før det tørrer hele dråbet.

Et korrekt smurt har en gullig farve (tynd), når ikke glasets kanter og slutter i et spor (overskæg).

Farvning af tørt smør fremstillet efter foreløbig fixering. Den bedste fiksering opnås i absolut methylenalkohol (3-5 minutter) eller i en blanding af Nikiforov af lige dele af absolut ethanol og ether (30 minutter).

De vigtigste hæmatologiske maling indbefatter methylenblåt og dets derivat - azurblåt I (methylen azurblåt) og azurblå II (en blanding af lige dele azurblå I og methylenblåt) til surt vandopløseligt gult eosin.

● Maleri af Romanovsky-Giemsa. Romanovsky-Giemsa-maling (fabriksfremstillet) har følgende sammensætning: Azur II - 3 g, vandopløselig gul eosin - 0,8 g, methylalkohol - 250 ml og glycerin - 250 ml. Arbejdsmalingopløsningen fremstilles ved en hastighed på 1,5-2 dråber af den færdige maling pr. 1 ml destilleret vand. Malingen hældes på et smear med et højere lag; farvningstid - 30-35 minutter Efter denne periode vaskes vatpindene med vand og tørres i luft. I denne metode er det muligt at differentiere kernen godt, men cytoplasmens neutrofile granularitet er meget værre, så det er meget anvendt til farvning af et perifert blodsprøjt.

● Kombineret maj-Grunwald-Romanovsky-Giemsa farvning ifølge Pappenheim. Et færdigt farvestof, et maj-Grunwald fixativ, som er en opløsning af eosinmethylenblåt i methylenalkohol, pipetteres på et fast smear i 3 minutter. Efter 3 minutter tilsættes en lige stor mængde destilleret vand til maling, der dækker opløsningen, og farvningen fortsættes i yderligere 1 minut. Derefter vaskes malingen, og smøret tørres i luften. Derefter males det tørrede smear med en nylavet vandig opløsning af Romanovsky-maling i 8-15 minutter. Denne metode betragtes som den bedste, især for udtværinger af marv punkt.

En stigning i antallet af leukocytter i det perifere blod over det normale niveau kaldes leukocytose, et fald kaldes leukopeni. Leukocytose (leukopeni) karakteriseres sjældent ved en proportionel stigning (reduktion) i antallet af leukocytter af enhver art, for eksempel leukocytose med fortykkelse af blodet. I de fleste tilfælde er der en stigning i antallet (fald) af en enkelt celletype. Forøgelsen eller faldet i antallet af individuelle typer leukocytter i blodet kan være relativt eller absolut, afhængigt af det totale leukocytantal - normalt, forhøjet eller nedsat. Ændringen i antallet, forholdet mellem individuelle former og morfologi af leukocytter afhænger af patogenens type og virulens, arten, kursen og omfanget af den patologiske proces, den individuelle reaktion af organismen.

Tælling af antallet af leukocytter og blodplader

Faktorer der påvirker rigtigheden af ​​undersøgelsen af ​​hvide blodlegemer

- lang opbevaring af blod ved stuetemperatur

Norm af indholdet af leukocytter i blodet

Alder Antal leukocytter

- 1 dag 11,6 - 22,0

- 1 uge 8,1.- 14,3

- 1 måned 7,6 - 12,4

- Voksne 4,0 - 9,0

Metoder til bestemmelse af antallet af leukocytter i blodet.

- Tæller antallet af leukocytter i tællekammeret

- Tælle leukocytter i hæmatologiske analysatorer

Bestemmelse af antallet af leukocytter i tællekammeret.

- Tælling af leukocytter under et mikroskop udføres efter lysering af røde blodlegemer i 100 store kvadrater i tællegitteret og genberegnes for 1 liter blod baseret på volumenet af kvadrater og fortynding af blod. Tællingen af ​​leukocytter bør foretages inden for 2-4 timer efter blodindsamling.

- Hvis der er nucleerede røde celler i det perifere blod, lyseres de ikke og tælles sammen med leukocytter. I dette tilfælde trækkes antallet af celler i den røde række for at bestemme det sande antal leukocytter fra det samlede antal tællede celler.

- For eksempel: Det samlede antal leukocytter i beregningen i kammeret (eller analysatoren) -45x109 / l. Ved beregning af leukocytformlen blev det konstateret, at 50 erythroblaster (normoblaster) er til stede pr. 100 leukocytter.

Vi beregner det ægte antal leukocytter i blodet:

150 celler - 45 x 109 / l

100 celler (leukocytter) - X

X = 100 * 45 * 10/1/150 = 30 * 10 / l

Således er det sande antal leukocytter i blodet 30 x 109 / l.

De vigtigste kilder til fejl ved beregningen af ​​leukocytter i kammeret:

- Forkert forhold mellem blod og eddikesyre volumener taget i et reagensglas.

- Forkert forberedt opløsning af eddikesyre (i en koncentration på mere end 5% kan nogle leukocytter lyse, hvilket vil føre til en undervurdering af resultatet).

- Langvarig eksponering af prøven ved temperaturer over 28 ° C, som kan accelerere lysis af leukocytter i prøven og føre til en undervurdering af resultatet.

- Forkert udfyldning af Goryaev-kammeret. Som med beregningen af ​​røde blodlegemer skal kameraet stå i 1 minut for at afregne cellerne.

- Goryaev-kameraet blev ikke vasket godt nok efter den foregående definition. Leukocytter tilbage i kammeret kan overvurdere resultaterne af analysen.

Blodplade tæller metoder

- i tællekammeret

Hver gruppe af metoder har fordele og ulemper.

- Tællingen af ​​blodplader i kammeret er tilstrækkeligt nøjagtig, kræver ikke at beregne antallet af røde blodlegemer. På den anden side er denne metode mere arbejdskrævende, da blodpladerne i den native form er repræsenteret af små og dårligt kontrastelementer. Ulempen ved fremgangsmåden er blodpladetælling i de kommende timer efter at have taget blod.

- Bestemmelse af antallet af blodplader i blodudsmid er signifikant ringere i nøjagtigheden af ​​kammermetoden eller automatiske tællere. Fejl ved tælling i blodudslip kan skyldes svag dårlige kvalitet og den dermed forbundne ujævn fordeling af blodplader, unøjagtig bestemmelse af antallet af røde blodlegemer. En signifikant ulempe ved fremgangsmåden er nødvendigheden af ​​samtidig at telle blodplader og røde blodlegemer i blodet. Fordelen ved det er evnen til at studere blodplader til enhver tid uanset tidspunktet for blodindsamling.

- Metoden til bestemmelse af blodplader ved hjælp af en hæmatologisk analysator giver dig mulighed for nøjagtigt at bestemme antallet af blodplader, deres gennemsnitlige volumen og volumenfordeling.

Metode til at tælle leukocytter i Goryaev-kammeret

Hvide blodlegemer - hvide blodlegemer - spiller en vigtig rolle i den antimikrobielle beskyttelse af kroppen. Granulocytter phagocytiserer mikrober og ødelægger dem ved hjælp af enzymer indesluttet i granuler; lymfocytter producerer antistoffer og giver immunresponser til kroppen.

Metoden til bestemmelse af testrørmetoden: Hæld i et reagensglas 0,4 ml af en opløsning af Türk (Türk's væske indeholder eddikesyre for at ødelægge røde blodlegemer og methylenblåt til farvningskerner af leukocytter). Brug en kapillærpipette til at trække 0,02 ml blod fra et frisk dråbe, blæs det forsigtigt i et reagensglas med et reagens og skyl pipetten. Bland godt. Samtidig er blodfortyndingen 20 gange. En dråbe fortyndet blod opsamles ved enden af ​​en rund glasstang og påføres på kanten af ​​et poleret glaskammer.

Tællingen udføres i 100 store ubrudte firkanter, sammensat af fire. Brugt en lille stigning.

Afledningen af ​​tælleformel nummer 1.

1. 100 kvadrater indeholder 1600 små firkanter (16x 100)

2. Blodvolumen over lille firkant 1/4000 mm3

3. Fortynding af blod 20 gange

Antal leukocytter i 1 μl blod = ved -4000-20. = Ax 50

For eksempel: 130 leukocytter blev talt i 100 store firkanter af Goryaev-gitteret. I 1 μl blod vil antallet af leukocytter være 130 x 50 = 6500 eller 6,5-10 3.

For at bestemme indholdet af leukocytter i 1 liter blod multipliceres antallet af leukocytter, udtrykt i tusinder, med 10 9.

I vores eksempel er antallet af leukocytter i 1 liter blod 6,5-10 9.

194.48.155.245 © studopedia.ru er ikke forfatteren af ​​de materialer, der er indsendt. Men giver mulighed for fri brug. Er der en ophavsretskrænkelse? Skriv til os | Kontakt os.

Deaktiver adBlock!
og opdater siden (F5)
meget nødvendigt

Leukocytter (leukocytter)

Leukocytter. Kvantitativ bestemmelse af leukocytter. Tælle leukocytter ved hjælp af kameraet Goryaeva. Kvantitativt indhold af leukocytter. Leukocytose.

Hvide blodlegemer

Antallet af leukocytter i blodet afhænger både af deres dannelseshastighed og på deres mobilisering fra knoglemarven såvel som på deres udnyttelse og migration i vævene (til læsionerne), indfangning af lungerne og milten. Disse processer påvirkes igen af ​​en række fysiologiske faktorer, og derfor er antallet af leukocytter i en sund persons blod udsat for udsving: det stiger ved slutningen af ​​dagen under fysisk anstrengelse, følelsesmæssig stress, indtagelse af proteinfødevarer og pludselige ændringer i omgivelsestemperaturen.

Kvantitativ bestemmelse af leukocytter

Leukocytter tælles ved hjælp af Goryaev kameraet og ved hjælp af automatiske tællere.

Tælle leukocytter ved hjælp af kameraet Goryaeva

Med in vitro-metoden til at tage blod for at tælle leukocytter:

• 0,4 ml af en opløsning af 3-5% eddikesyre tonet med methylenblåt hældes i røret. Brug en kapillærpipette til at tegne 20 μl blod fra en frisk dråbe (fortynding 20 gange), blæk forsigtigt i et reagensglas med et reagens og skyl pipetten. Bland godt
• et rent og tørt dækglas gnides på kammeret, så regnbue ringe danner ved kontaktpunktet;
• Blod fortyndet i et reagensglas, bland godt. Enden af ​​en rund glasstang tager en dråbe blod og bringer den til kanten af ​​kammerets polerede glas;
• efter påfyldning af kammeret står det i 1 minut i ro for sedimentation af leukocytter;
• Leukocytter betragtes ved lav forstørrelse (objektiv × 8 eller × 9, okular × 10 eller × 15) med mørkere synsfelt (med nedsænket kondensator eller indsnævret membran);
• Til tilfredsstillende resultater tælles leukocytter i 100 store firkanter.

At vide mængden af ​​et stort firkant og graden af ​​fortynding af blod, find antallet af leukocytter i 1 μl og 1 liter blod. Siden af ​​det store torv er 1/5 mm, området er 1/25 mm2, rumfanget over dette torv er 1/250 mm3.

Formel til tælling af hvide blodlegemer:

hvor B er antallet af leukocytter i 100 store firkanter;
P - fortyndingsgrad (20).

Leukocyttælling

Norm: 4,0-9,0 × 10 9 / L

Forøgelsen af ​​antallet af leukocytter over 9,0 × 10 9 / l kaldes
leukocytose, et fald i deres antal under 4,0 × 10 9 / l - leukopeni. Imidlertid kan endog 3,5 × 10 9 i 1 liter leukocytter til en række individer være normen. Ifølge litteraturen har sådanne mennesker øget immunresistens, og de er mindre tilbøjelige til at blive syge, hvilket tilsyneladende skyldes behovet for et immunrespons at have en reserve af leukocytter i væv, hvor der er 50-60 gange mere end i blodbanen. Det er klart, at hos sunde individer med lave hvide blodlegemer i perifert blod øges deres reserver i væv tilsvarende. Dette fænomen forklares af arvelig og familiær karakter eller ved en stigning i påvirkning af det parasympatiske nervesystem.

Leukopeni kan være funktionelt og organisk.
Funktionel leukopeni er forbundet med dysregulering af bloddannelse og observeres:

• med nogle bakterielle og virale infektioner (tyfusfeber, influenza, kopper, rubella, Botkin's sygdom, mæslinger);
• under virkningen af ​​stoffer (sulfonamider, analgetika, antikonvulsiva midler, antithyroid, cytostatiske og andre lægemidler);
• under muskulært arbejde, introduktion af fremmed protein, nerve- og temperatureffekter, sult, hypotoniske tilstande;
• falsk leukocytopeni kan være associeret med leukocytaggregering under langtidsopbevaring af blod ved stuetemperatur (mere end 4 timer).

Organisk leukopeni som følge af knoglemarv aplasi og dens udskiftning med fedtvæv opstår når:

• aplastisk anæmi;
• agranulocytose;
• leukopenisk leukæmi;
• nogle former for Hodgkins sygdom;
• ioniserende stråling;
• hypersplenisme (primær og sekundær);
• kollagen sygdomme.

leukocytose

Leukocytose er reaktionen af ​​det hæmatopoietiske system til virkningerne
eksogene og endogene faktorer. Der er fysiologisk og patologisk leukocytose.

Fysiologisk leukocytose er:

• fordøjelsesvæske - efter at have spist, især højt i protein; antallet af leukocytter overstiger ikke 10,0-12,0 × 10 9 / l og efter 3-4 timer vender det tilbage til det normale;
• med følelsesmæssig stress (adrenalin), alvorlig fysisk anstrengelse, afkøling, for høj solstråling (solskoldning), administration af et antal hormoner (catecholaminer, glukokortikosteroider osv.) i anden halvdel af graviditeten under menstruation og på grund af den ujævn fordeling af leukocytter i blodet den almindelige.

Patologisk leukocytose er opdelt i absolutte og relative.

Absolut leukocytose - en stigning i antallet af leukocytter i blodet op til flere hundrede tusinde (100,0-600,0 × 10 9 / l og mere).

• Oftest observeret i leukæmi: i kronisk leukæmi - i 98-100% af tilfældene i akut leukæmi - i 50-60%. Ændring af forholdet mellem leukocytceller i knoglemarv og blodpunkta tjener som grundlag for diagnosen leukæmi.

Relativ leukocytose observeres:

• akutte inflammatoriske og infektiøse processer, med undtagelse af tyfusfeber, influenza, kopper, rubella, Botkin's sygdom, mæslinger. Den største leukocytose (op til 70,0-80,0 × 10 9 / l) observeres i sepsis;
• under påvirkning af giftige stoffer (insektgift, endotoksiner), ioniserende stråling (umiddelbart efter bestråling);
• som følge af virkningen af ​​kortikosteroider, adrenalin, histamin, acetylcholin og digitalispræparater;
• med vævsdestintration (nekrose), myokardieinfarkt, trombose af perifere arterier med udvikling af gangren, forbrændinger, exudativ pleurisy, perikarditis, uremi, hepatisk koma;
• signifikant blodtab i skader, indre, gynækologiske og andre blødninger.

Forøgelsen af ​​antallet af leukocytter i infektionssygdomme ledsages i de fleste tilfælde af et skift af leukocytformlen til venstre

Leukocyttælling

Antal leukocytter beregnes ved hjælp af en automatisk tæller eller i et Goryaev-kammer. For at tælle leukocytterne i kammeret fremstilles en Turk væske. En eddikesyreopløsning tonet med en vandig opløsning af methylenblåt (0,1 ml af en 0,1% opløsning af methylenblåt sættes til 9 ml 10% eddikesyre). I et reagensglas hældes 0,4 ml flydende Türk. Få præcis 0,02 ml blod, tilsæt forsigtigt til fortyndingsvæsken. Fortynding af blod er 1:20. Bland godt og lad i 4 minutter. Fyld kammeret Goryaeva, efter omhyggeligt at ryste røret med fortyndet blod. Kameraet bliver efterladt i 1 min på en flad overflade til sedimentation af leukocytter. Så tælles leukocytter ved lav forstørrelse af mikroskopet (objektiv 8, okular 10 eller 15) med mørkret synsfelt (med kondensatoren sænket eller den indsnævrede membran). Leukocytter anses for at være i 100 ikke-frigivne store firkanter, hvilket svarer til 1600 små. Resultaterne af tælling af celler i store firkanter opsummerer og beregner deres antal i 1 μl blod ved hjælp af formlen:

hvor X er antallet af leukocytter i 1 μl blod; A - antallet af celler tælles i 100 store firkanter; 1600 - antallet af små firkanter; 20 - blodfortynding 4000 er en multiplikator, der resulterer i et volumen på 1 μl blod baseret på volumenet af en lille firkant (1/4000 μl).

Tælling af leukocytformel. Farvede perifere blodprøver undersøges. En nødvendig betingelse for korrekt overvejelse af de morfologiske træk ved blodceller er en korrekt lavet og godt farvet blodsprøjt. Et blodsprøjt udføres på tørre, rene, godt affedtede lysbilleder, alderen i en blanding af Nikiforov (ethylalkohol 96 º og diethylether 1: 1). Ved at tage et glasskinne til lange kanter, rør overfladen til en dråbe blod (men ikke hud), der frigives fra punkteringen, eller anbring en bloddråbe med en mikropipette eller en kapillær. Et glasglass holdes på bordet eller i venstre hånd for smalle kanter. Brug den højre hånd ved at anvende grundglaset med en smal kant til glasset med blod til venstre for dropen i en vinkel på 45 ° og skub den til højre, indtil den rører ved blodet. De venter til blodet spredes over hele kanten af ​​grundglaset, og derefter med en hurtig hurtig bevægelse føres det fra højre til venstre, indtil hele dråbet er opbrugt. En dråbe blod skal være lille og proportioneret, så hele smøret placeres på glasset og ikke når 1-1,5 cm før dets kant. Et godt fremstillet smear er tyndt, har en gullig farve og slutter i en "kost". Lufttørrede blodudslæt anbringes i specialretter til fiksering eller i almindelige glasbriller fyldt med fastgørelsesvæske (methylalkohol, fixeringstid 3-5 minutter, ethylalkohol, 30 minutter, Nikiforov-blanding, 20-30 minutter). Faste præparater tørres i luften og farves derefter med Romanovsky-Giemsa-farvestof. Den færdige malingsopløsning Romanovsky-Giemsa (azureosin) fortyndes 1:10 i det krævede volumen til farvning. Faste udstrygninger hældes med fortyndet maling, der hældes på smøret med et muligvis højere lag. Farvning varer, afhængigt af lufttemperaturen i rummet fra 25 til 45 minutter. Efter afslutning af malingen afvaskes malingen med destilleret vand og sætter streger lodret i en træplade til tørring. Mikroskopi af blodudstrygninger udføres med nedsænkning ved 100x10 forstørrelse. Tælling af leukocytter udføres langs en zigzaglinie ("Meander line"). 100-200 celler tælles under hensyntagen til antallet af individuelle former for leukocytter: stiv og segmenterede neutrofiler, eosinofiler, basofiler, monocytter, lymfocytter. Beregn procentdelen af ​​hver celletype.

Tæller det absolutte antal fagocytter og lymfocytter. Det absolutte antal fagocytter (neutrofiler og monocytter) og lymfocytter hos højere hvirveldyr beregnes på grundlag af data om antallet af leukocytter i perifert blod og leukocytformel.

Phagocytisk funktionstest

Bestemmelse af fagocytisk indeks og fagocytisk nummer

Et stort antal teknikker er blevet udviklet for at vurdere leukocytternes absorption og fordøjelsesaktivitet. Alle er baseret på phagocytes evne til at absorbere fremmede partikler, der udgør testsystemet (en bestemt type mikroorganisme, zymosan, latex - absorptionsobjektet). Åbenbaringen udføres in vitro eller in vivo. Det generelle bestemmelsesniveau er som følger: Hepariniseret eller citreret friskblod (eller phagocyt suspension) blandes med et lige stort volumen suspenderet daglig mikrobiel suspension (Saccharomyces cerevisiae, Staphilococcus aureus, S. albus, E. coli, A. nhydrophila) eller en anden absorptionsobjekt. Blandingen blandes forsigtigt og anbringes i en termostat (37-40ºі - for varmblodig afhængig af kroppens normale temperatur, 26 ° C - til varmelovende fisk og lavere for koldt). Efter 15, 30, 45, 60 og 90 minutter fremstilles udsmykninger på glider, tørres, fastgøres med methylalkohol eller en Nikiforov-blanding og farves efter Romanovsky-Giemsa. De ser på udstødninger under nedsænkning og bestemmer fagocytisk aktivitet - andelen fagocytter, der deltager i fagocytose, fagocytisk indeks - antallet af testmikroer fanget af en fagocytisk leukocyt, fagocytisk tal - det gennemsnitlige antal fagocytiske genstande pr. 1 aktiv neutrofile. Evaluering af indikatorer ved forskellige tidsintervaller giver os mulighed for at estimere fagocytosens dynamik. Normalt skal det fagocytiske indeks efter 90 minutter være lavere end efter 45 minutter og 60 minutter på grund af fordøjelsen af ​​mikrober. I tilfælde af krænkelse af fordøjelsen ændres det ikke.

Vurdering af phagocyternes funktionelle aktivitet ved reduktionsreaktionen af ​​nitroblåtetrazol

Denne test er en indikator for fagocytternes baktericide funktion og giver dig mulighed for at evaluere deres evne til iltafhængig drab. Når denne drabsmekanisme aktiveres aktiveres enzymet NADPH oxidase, hvilket fører til udseendet af reaktive oxygenarter i fagocyt. Frigivelsen af ​​sådanne stoffer i cellen kaldes en ilt (respiratorisk) eksplosion, som kan registreres ved hjælp af NBT testen. I formuleringen af ​​denne test tilsættes stoffet nitrosiniumtetrazolium til fagocytterne, det absorberes af cellen, og i nærvær af reaktive oxygenarter omdannes til et mørkblåt farvet stof diformazan. Jo mere mørkeblå granulater er fastgjort på overfladen eller inden i fagocyten, desto mere aktive iltformer dannes, jo mere iltafhængige drab.

NBT-testen er indstillet i to versioner: spontan og induceret. Når man opretter en spontan NBT-test, dyrkes fagocytter i nærvær af NST uden forudgående aktivering af cellerne, når der udføres den inducerede NBT-test, tilsættes en aktivator af fagocytreaktionen til dyrkningsmediet. Indstillingen af ​​NBT-testen i to varianter tillader beregning af cellernes funktionelle reserve, hvilket er forskellen mellem antallet (intensitet) af inducerede diformazan-positive celler og antallet (intensiteten) af spontane diformazan-positive celler. Værdierne af den inducerede NBT-test karakteriserer aktiviteten af ​​fagocytiske celler i nærvær af en antigenstimulus og betragtes som et kriterium for deres beredskab til fuldstændig fagocytose. Den spontane NBT-test gør det muligt at estimere graden af ​​aktivering af iltafhængige drabsmekanismer af ikke-aktiverede fagocytter. Det karakteriserer graden af ​​aktivering af intracellulære mikrobicide systemer.

For at danne en spontan NBT-test tilsættes 0,05 ml af en 0,2% opløsning af NBT i kaliumphosphatpuffer (0,1, pH 7,3) og 0,05 ml af den samme buffer til 0,1 ml blod. Parallelt anbringes en prøve for at tage højde for den inducerede NBT-test, hvor i stedet for 0,05 ml buffer tilsættes det samme volumen fagocytisk aktivator (fx pyrogenal ved en koncentration på 50 μg / ml). Reaktionsblandingen termosteres i et vandbad ved 37 ° C (30-60 minutter). Mellemdensitetsudstrygninger fremstilles, tørres i luft og fastgøres i ethylalkohol eller Nikiforov-blanding (20 min) og males derefter med en vandig opløsning af neutralt rødt (0,1%, 1 min)

Efter reaktionen er blodtryk mikroskoperet under nedsænkning (100 × linse, 10 × okular). Blandt 100 celler tælles andelen af ​​aktiverede neutrofiler (DAN,%) indeholdende diformazangranuler. Antallet af deponerede i cellerne af diphormazan vurderer deres aktivitet i vilkårlig enheder og beregner indekset for neutrofiltaktivering (IAN, anvendt):

hvor er H_neg. - antallet af celler, der ikke indeholder diformazan granuler;

H₁ - antallet af celler, hvor området af diformazanaflejringer er mindre end 1/3 af kernens areal

H₂ - antallet af celler, hvor forekomster af diformazan tager fra 1/3 til hele størrelsen af ​​kernen

H₃ - Antallet af celler, hvor diformazanaflejringer optager et større område af kernen.

Afledningen af ​​mobiliseringskoefficienten (KM) udført i overensstemmelse med følgende formel:

Bestemmelse af leukocytter i blodet

Indholdet af artiklen

• Bestemmelse af leukocytter i blodet
• Hvad er leukocytter til?
• Hvad er graden af ​​den generelle analyse af blod hos kvinder

Antallet af leukocytter i blodet

Der findes ikke et fast fast antal leukocytter, som vil blive betragtet som normen for alle mennesker. Denne tal varierer med personens alder: Jo ældre personen er, desto mindre er antallet af leukocytter i hans blod. Det normale antal leukocytter i en nyfødt baby er 9-30x109 / l. I en voksen er denne tal tre gange mindre - 4-9x109 / l. Indikatoren for mængden af ​​disse partikler i blodet kan lidt afvige fra normen afhængigt af kroppens funktionstilstand og endog tidspunktet på dagen.

Så i blodet af gravide er der et øget antal leukocytter. Normen stiger i første gang efter et måltid efter træning, med overophedning og afkøling. Men hvis antallet af partikler stiger tre gange mere end normen, så er dette et tegn på en sygdom, der udvikler sig i kroppen.

En tilstand, hvor kroppen har et højt indhold af leukocytter, kaldes leukocytose, og omvendt tilstand kaldes leukopeni. Det skal bemærkes, at kvaliteten af ​​blodprøveudtagning til analyse stærkt påvirker antallet af leukocytter: proceduren skal altid udføres på tom mave.

Sådan bestemmer du antallet af leukocytter

At bestemme niveauet af blodleukocytter på flere måder: ved at donere blod, udtværing, urin eller sæd.

Det er meget vigtigt at overvåge niveauet af hvide blodlegemer i urinen under graviditeten. Høje satser angiver tilstedeværelsen i kroppen af ​​en kvinde, der bærer et barn, inflammatoriske processer, for eksempel pyelonefrit eller cystitis.

Glem ikke, at det endelige resultat af analysen afhænger af den rette adfærd. Derfor genanvendes læger, før de foreskriver potentielle lægemidler til en gravid kvinde.

Følgende procedure bruges til at læse antallet af leukocytter i blodet, sæden eller urinen. En vis del af væsken anbringes i apparatcentrifugen. Bundfaldet påføres glasset og undersøges under et mikroskop. For at tælle antallet af leukocytter farves sedimentet med et specielt farvestof. Herefter beregnes det tilsyneladende antal leukocytter i synsfeltet.

Hvis analysen viste en afvigelse fra det normale antal hvide blodlegemer, er det nødvendigt at finde ud af årsagen til stigningen i antallet af partikler. Nogle sygdomme diagnosticeres ved at tjekke antallet af hvide blodlegemer.

Leukocytter, deres antal og hovedgrupper. Metoder til bestemmelse af antallet af leukocytter. Leykoformula og dets værdi.

Leukocytter Norm - (4-9) x109 / l blod. Deres antal afhænger af formationshastigheden i lymfeknuder, milt og knoglemarv, mobilisering fra knoglemarv, udnyttelse og migration i vævet, indfangning af lungerne og milten og fysiologiske faktorer. Hovedfunktionen af ​​granulocytter (primært neutrofile) fagocytiske er indfangningen og fordøjelsen af ​​fremmedlegeme ved hjælp af hydrolytiske enzymer. Ved vurderingen af ​​antallet af leukocytter i klinikken anvendes leukocytformlen - procentdelen af ​​individuelle former for leukocytter. Normalt er denne værdi konstant.

Leukocytformel

Forøgelsen i antallet af leukocytter til flere titusinder indikerer leukocytose og observeres ved akutte inflammatoriske og infektionssygdomme ledsaget af et skift af leukocytformlen til venstre. En stigning i antallet af leukocytter til flere hundrede tusind point til leukæmi. Ved alvorlige infektionssygdomme ændres den neutrofile morfologi: nedbrydning, vakuolisering mv. Et fald i antallet af leukocytter under 4000 indikerer leukopeni, oftere agranulocytose. Reduktion af antallet af hvide blodlegemer kan være forbundet med brugen af ​​forskellige lægemidler, øget radioaktiv baggrund, urbanisering osv. Neutropeni manifesteres under påvirkning af cytostatika med lupus, rheumatoid arthritis, malaria, salmonella, brucellose, som et specifikt syndrom - med aids og stråling.

Neutrofile leukocytter. Indhold i blodet - 50-75% (2,2-4,2) x109 / l. Diameter -10-12 mikron.

Kernen er kompakt, består af 3-4 segmenter, forbundet med broer; cytoplasma med rigelig grit. I infektioner og inflammationer udfører neutrofiler funktionen af ​​makrofager - celler i stand til fagocytose.

Leukocytter er eosinofile. Hastigheden er 1-5% leukocytter, (0,1-0,3) x109 / l. Celler større end neutrofiler, op til 12 mikrometer i diameter. Kernen består ofte af 2-3 segmenter. Cytoplasmaet er en smule basofil, indeholder en stor, klar farvning med eosingranularitet, hvilket giver en positiv oxidase, peroxidase, cytochromoxidase, succinatdehydrogenase, sur fosfatase-reaktioner. De er i stand til fagocytose, deltager i afgiftning af proteinprodukter og allergiske reaktioner i kroppen. Eosinofili er karakteristisk for helminthinfektioner, det er muligt i stadiet af konvalescens i infektionssygdomme.

Leukocytter basofile. Indhold i blodet - 0-1% (op til 0,06 x109 / l). Diameter er fra 8 til 12 mikron. Kernen er bred, uregelmæssigt formet. Cytoplasma indeholder et stort korn, der farves metakromatisk i violet-sorte toner. Deltag i allergiske reaktioner (øjeblikkelige og forsinkede typer): Histamin og heparin (en gruppe heparinocytter) produceres.

Monocytter / makrofager. Hastigheden er 2-10% af leukocytter, (0,2-0,55) x109 / l. Størrelser fra 12 til 20 mikron. Kernen er stor, løs, med en ujævn fordeling af chromatin. De cirkulerer ikke i blodet for længe, ​​passerer ind i væv, omdannes til makrofager, der er i stand til amoeboid bevægelse. Ledende celler af kroppens immunrespons. Hovedfunktionen er endocytose. De er det centrale led i det mononukleære fagocytiske system. En række cytokinafhængige funktioner udføres: hæmatopoietisk, immunostimulerende, proinflammatorisk, immunosuppressiv og antiinflammatorisk.

Makrophagesekretionsprodukter:

Proteaser: plasminogenaktivator, collagenase, elastase, angiotensinkonvertase.

Mediatorer af inflammation og immunomodulation: interleukin-1 (IL-1), tumornekrosefaktor a, interferon y, lysozym, neutrofiltaktionsfaktor, komplementkomponenter C1, C2, C3, C5, properdin, faktorer B, D, IL-3, IL -6, IL-8, IL-10, IL-12, IL-15.

Vækstfaktorer: CSF-GM, CSF-G, CSF-M, fibroblastvækstfaktor, transformerende vækstfaktor.

Koagulationsfaktor og fibrinolysehæmmere: V, VII, IX, X, plasminogenhæmmere, plasminhæmmere.

Klæbemidler: fibronectin, thrombospondin, proteoglycaner.

Kameraoptællingsmetode

Udtagning og fortynding af blod produceret ved rørmetoden. 0,4 ml fortyndingsvæske og 0,02 ml kapillærblod indføres i røret (fortrinsvis Vidalevskaya). Den resulterende fortynding anses praktisk talt for at være 1:20. En 3-5% opløsning af eddikesyre tonet med methylenblåt anvendes sædvanligvis som fortyndingsmiddel (eddikesyre lyses erythrocytter, methylenblå pletter kernerne af leukocytter). Før påfyldning af kammeret Goryaeva rør med fortyndet blod rystes grundigt. Kammeret er fyldt på samme måde som for røde blodlegemer.

Leukocytter er meget mindre end erythrocytter (1-2 pr. Store kvadrat), derfor er der for nøjagtighed foretaget tællinger i 100 store firkanter (ugraderet).

Beregning: 100 store firkanter (1600 små) tælles en leukocyt. Husk at mængden af ​​en lille firkant er 1/4000 mm 3, og blodet fortyndes 20 gange, antallet af leukocytter i 1 μl blod beregnes: 4000 * 20 og divideret med 1600 = a * 1/2. For at opnå det faktiske indhold af leukocytter i 1 μl blod er det tilstrækkeligt at dividere i det halve antal opnået i beregningen og tilføje 2 nuller. Den gennemsnitlige metodefejl er ± 7%.

Mere præcis (2-3% fejl) og perfekt er antallet af leukocytter ved hjælp af elektroniske enheder. Tællingen af ​​leukocytter i partikeltællere udføres ifølge samme princip som erythrocytter. Forblod fortyndes og blandes med eventuelle reagenslysering af røde blodlegemer. I analysatoren "Technicon" anvendes der som sådan en opløsning af eddikesyre i apparatet "Culter" og "Celloskop" - saponin eller sapoglobin, der tilsættes fortyndet (1: 500, 1: 700) i isotonisk natriumchloridopløsning (6 dråber pr. 20 ml fortynding).

12. Funktioner af granulocytter. T-og B-lymfocyternes rolle i skabelsen af ​​specifikke immunitetsmekanismer:

Immunsystemets hovedceller er T- og B-lymfocytter, som cirkulerer i blodbanen og lymfesystemet, der hele tiden bevæger sig fra et organ i immunsystemet til andre, har evnen til at gå ud i væv for at udføre beskyttende funktioner (figur 1).

I beskyttelsesreaktioner af specifik immunitet udover T og B-celler interagerer fagocytiske celler (granulocytter, monocytter, makrofager), "naturlige killere", mastceller, endotel- og epithelceller, som spiller rollen som hjælpeceller, interaktion med T- og B-celler. lymfocytter.

Immunresponsen består af en kompleks serie af cellulære interaktioner, der aktiveres ved indtagelse af fremmed antigenmateriale. For det første indfanger makrofagen kroppen, som bærer antigenerne. Derefter fjerner makrofagen en del af antigenet (peptidet) og viser det på overfladen, som om det præsenteres for immunceller. Aktivering af en lymfocyt med et antigen fører til proliferationen og transformationen af ​​lymfocytter.

Lymfocytter er de eneste celler i kroppen, der er i stand til specifikt at genkende deres egne og fremmede antigener og reagere ved aktivering for at komme i kontakt med et specifikt antigen. Med en meget lignende morfologi er lymfocytter opdelt i to populationer, der har forskellige funktioner og producerer forskellige proteiner.

En af befolkningerne hedder B-lymfocytter. Hos mennesker udvikler B-lymfocytter i knoglemarven. B-lymfocytter genkender antigener ved hjælp af specifikke immunoglobulinreceptorer, som, som B-lymfocytter modnes, vises på deres membraner. B-lymfocytter er i stand til at genkende og binde protein-, polysaccharid- og lipoproteinopløselige antigener. B-lymfocyternes hovedfunktion er specifik anerkendelse af antigenet. Genkendelsen af ​​antigenet fører til aktivering, proliferation og transformation af B-lymfocytter i plasmaceller - producenter af specifikke antistoffer - immunoglobuliner. Således dannes et humoralt immunrespons. B-lymfocytter har oftest brug for T-lymfocytter i form af aktiverende cytokinprodukter til udvikling af det humoral immunrespons.

En anden population kaldes T-lymfocytter på grund af differentieringen af ​​deres precursorer i thymus. T-lymfocytter udfører den vigtigste funktion af specifik anerkendelse og binding af antigenet. T-lymfocytter aktiveret med antigener prolifererer og omdannes til forskellige subpopulationer, som yderligere deltager i alle former for immunresponset. En aktiveret T-lymfocyt producerer og udskiller også cytokiner, som forbedrer processen med at øge antallet af T-lymfocytter, B-lymfocytter og makrofager selv.

Blandt de modne T-lymfocytter er der to hovedpopulationer: T-hjælperceller (CD4 +) og T-killerceller - cytotoksiske T-lymfocytter (CD8 +). Mærket "CD" er et kendetegn ved "celleoverfladefænotype" - "differentieringsklynge" (fra engelske klynger af differentiering - CD).

Der er en anden type lymfocytter - store granulære lymfocytter, som adskiller sig fra mindre T-celler og B-lymfocytter, ikke kun af strukturegenskaberne, men også af fravær af antigengenkendelsesreceptor. Disse celler kaldes "natural killers": de er i stand til at dræbe målceller eller tumorceller inficeret med forskellige vira (se tabel 1).

Tabel 1. Klassificering af humane lymfocytter

T-celler påvirker destruktivt følgende objekter:

1. Maligne celler.

2. Celler inficeret med mikroorganismer.

3. Transplanterede organer og væv.

Hele cellen er involveret i angrebet, så svaret hedder cellulær immunitet.

Således er der to hovedtyper af immunrespons:

· Cellular immunitet er en funktion af T-lymfocytter.

· Humoral immunitet - med deltagelse af B-lymfocytter.

Der er en anden subpopulation af T-lymfocytter: regulatoriske T-lymfocytter, T-regulerende celler Treg), T-suppressorer er centrale regulatorer af immunresponset. Deres primære funktion er at kontrollere styrken og varigheden af ​​immunresponset ved regulering af funktionen af ​​T-effektorceller (T-hjælperceller og T-cytotoksiske celler).

Fig. 2. Generel reaktion på immunresponsen

Fænomenet undertrykkelse af immunresponset var kendt i lang tid, men dets mekanismer var ikke kendte. Eksistensen af ​​specifikke T-suppressorceller blev derfor foreslået, men eksistensen af ​​disse celler er ikke blevet bekræftet eksperimentelt i lang tid. Det var kun i slutningen af ​​1990'erne og begyndelsen af ​​2000'erne, at eksistensen af ​​visse T-celler blev vist, som var karakteriseret ved fænotypen CD25 + FOXP3 + og effektivt undertrykt immunresponsen.

13. immunitet, dets ikke-specifikke og specifikke mekanismer:

Adaptiv (forældet, erhvervet, specifik) immunitet har evnen til at genkende og reagere på individuelle antigener, er karakteriseret ved en klonal respons, lymfoide celler er involveret i reaktionen, der er en immunologisk hukommelse, er auto-aggression mulig.

Klassificeret til aktive og passive.

• Erhvervet aktiv immunitet opstår efter lidelse af en sygdom eller efter administration af en vaccine.
• Erhvervet passiv immunitet udvikler sig, når færdige antistoffer indføres i kroppen i form af serum eller overføres til nyfødte med moderens kolostrum eller prenatalt.

En anden klassificering adskiller immuniteten i naturlige og kunstige.

• Naturlig immunitet omfatter medfødt immunitet og erhvervet aktiv (efter sygdom) samt passiv immunitet ved overførsel af antistoffer til barnet fra moderen.
• Kunstig immunitet omfatter erhvervet aktiv efter vaccination (vaccinadministration) og erhvervet passiv (serumadministration).

Medfødt (ikke-specifik) immunitet skyldes evnen til at identificere og neutralisere forskellige patogener i henhold til de mest konservative, der er fælles for dem, rækkevidde af evolutionært slægtskab, før det første møde med dem. I 2011 blev Nobelprisen i medicin og fysiologi tildelt til at studere nye mekanismer med medfødt immunitet (Ralph Steinman, Jules Hoffman og Bruce Byotler).

Det udføres hovedsageligt af celler i myeloid-serien, har ikke streng specificitet for antigener, har ingen klonale respons, har ikke mindet om primær kontakt med et fremmed middel.

14. Mononukleært fagocytisk system:

Systemet med mononukleære fagocytter (græsk monox one + lat. Nucleos-kerne: græske pagoer fortærende, absorberende + gistol sutus celle; synonym: makrofagesystem, monocyt-makrofagsystem) - det fysiologiske forsvarssystem af celler med evnen til at absorbere og fordøje fremmedlegemer. De celler, der udgør dette system, har en fælles oprindelse, præget af morfologisk og funktionel lighed og er til stede i alle væv i kroppen.

Grundlaget for det moderne koncept for systemet med mononukleære fagocytter er den fagocytiske teori, der er udviklet af I.I. Mechnikov i slutningen af ​​det 19. århundrede og undervisningen af ​​den tyske patolog Aschoff (K.A.L Aschoff) om retikuloendotelialsystemet (RES). Oprindeligt blev RES isoleret morfologisk som et system af legemsceller, der er i stand til at akkumulere det vitale farvestofkarmin. På dette grundlag blev bindevævshistiocytter, blodmonocytter, leverkupfferceller i leveren, såvel som retikulære celler i de bloddannende organer, endotelceller af kapillærer, knoglemarvsenes og lymfeknudernes bihule tildelt RES. Med akkumulering af ny viden og forbedring af morfologiske forskningsmetoder blev det klart, at ideer om reticuloendotelialsystemet er vage, ikke specifikke og i en række bestemmelser simpelthen fejlagtige. For eksempel blev en kilde af fagocytiske celler i lang tid tilskrevet retikulære celler og endotelet af knoglemarv og lymfeknuder, der viste sig for at være forkerte.

Det er nu blevet konstateret, at mononukleære fagocytter stammer fra cirkulerende blodmonocytter. Monocytter modnes i knoglemarv, og indtaster derefter blodbanen, hvorfra de vandrer ind i væv og serøse hulrum, bliver makrofager. Retikulære celler udfører en understøttende funktion og skaber det såkaldte mikromiljø for hæmatopoietiske og lymfoide celler. Endotelceller transporterer stoffer gennem kapillarvæggene. Retikulære celler og vaskulært endotel er ikke direkte relateret til det beskyttende system af celler. I 1969 blev der på konferencen i Leiden afsat til REC-problemet, betragtet som "reticuloendothelial system" forældet. I stedet vedtog det begrebet et system af mononukleære fagocytter. Ved dette system, omfatter histiocyter bindevæv, Kupffer-celler i leveren (stjerneform retikuloendoteliotsity), alveolære makrofager, lungemakrofager af lymfeknuder, milt, knoglemarv, pleurale og peritoneale makrofager, osteoklaster i knoglevæv, mikroglia nervevæv synoviocytter synoviale membraner, hudceller Langergaisa, pigmentfrie granulære dendrocytter. Der er gratis, dvs. bevæger sig gennem vævene og faste (residente) makrofager, der har et relativt permanent sted.

Makrofager og tekstiler serøse hulrum, ifølge scanningselektronmikroskopi, har en form tæt på sfærisk med pixeleret foldet overflade dannet af plasmamembranen (tsitolemmy). Under dyrkningssituationer spredes makrofager på overfladen af ​​substratet og erhverver en fladform, og under bevægelse danner de flere polymorfe pseudopodier.

Et karakteristisk ultrastrukturelt træk ved en makrofag er tilstedeværelsen i sin cytoplasma af talrige lysosomer og fagolysosomer eller fordøjelsesvakuoler. Lysosomer indeholder forskellige hydrolytiske enzymer, der sikrer fordøjelsen af ​​absorberet materiale. Makrofager er aktive sekretoriske celler, der frigiver enzymer, inhibitorer og komplementkomponenter i miljøet. Det primære sekretoriske produkt af makrofager er lysozym. Aktiverede makrofager udskiller neutral proteinase (elastase, collagenase), plasminogenaktivatorer, komplement faktorer, såsom C2, C3, C4, C5, og interferon.

Celler af systemet med mononukleære fagocytter har en række funktioner baseret på deres evne til endocytose, dvs. absorption og fordøjelse af fremmede partikler og kolloide væsker. Takket være denne evne udfører de en beskyttende funktion. Ved makrofagkemotaxi migrere til steder med infektion og inflammation, hvor mikroorganismerne udføres fagocytose, dræbe dem og fordøje. Under forhold med kronisk inflammation kan forekomme specielle former fagocytter - epithelioide celler (fx i infektiøs granuloma) og kæmpestore flercellede celler celletype Pirogov - Langhans type celler og fremmedlegemer. som dannes ved sammensmeltning af individuelle fagocytter i en polykaryon - en multi-core-celle. I granulomer producerer makrofager glycoprotein fibronectin, som tiltrækker fibroblasci og bidrager til udviklingen af ​​sklerose.

Celler Det mononukleære fagocyt-system er involveret i immunprocesser.

En forudsætning for udviklingen af ​​en rettet immunrespons er således den primære interaktion mellem makrofagen og antigenet. På samme tid absorberes antigenet og behandles af makrofagen i den immunogene form. Immunstimulering af lymfocytter forekommer gennem direkte kontakt med makrofagen, der bærer det transformerede antigen. Immunresponsen udføres generelt som en kompleks multi-trins interaktion mellem G og B lymfocytter med makrofager.

Makrofager har antitumoraktivitet og udviser cytotoksiske egenskaber mod tumorceller. Denne aktivitet er især udtalt i de såkaldte immune makrofager bærer lyse af tumormålceller i kontakt med de sensibiliserede T-lymfocytter, der bærer cytophilous antistof (lymfokiner).

Celler i det mononukleære fagocytsystem er involveret i reguleringen af ​​myeloid og lymfoid hæmatopoiesis. Således øer af hæmatopoiese i knoglemarv, milt, lever, blommesækken og embryo dannet omkring særlige celler - den makrofag centrale organiserende erythropoiese erythroblastic ø. Kupffer-celler i leveren er involveret i regulering af blod ved at producere erythropoietin. Monocytter og makrofager producerer faktorer, som stimulerer produktionen af ​​monocytter, neutrofiler og eosinofiler. I thymus (thymus) og thymusafhængige områder af lymfeorganer findes de såkaldte interdigitiruyuschie celle - specifikke stromale elementer er også relateret til cistems mononukleære fagocytter er ansvarlige for migration og differentiering af lymfocytter.

Udvekslingsfunktionen af ​​makrofager er deres deltagelse i metabolismen af ​​jern.

I milten og knoglemarv makrofager erythrophagocytosis udføres, mens i dem forekommer ophobning af jern i form af ferritin og hæmosiderin, som kan Pitom reutilizirovatsya erytroblaster.

15. Leukocyto og dens typer. leukopeni:

Leukocytformlen er procentdelen af ​​visse typer leukocytter i perifert blod. Leukocytformlen er modificeret på en bestemt måde, typisk for hver specifik sygdom. Leukocytter med forskellige sygdomme, ofte med infektioner, ændres kvantitativt.

Forøgelse af antallet af leukocytter - leukocytose, nedsættelse af leukopeni.

Leukocytose kan være fysiologisk og patologisk, den første forekommer hos raske mennesker, den anden - med nogle smertefulde tilstande. Leukocytose er en ændring i blodets cellulære sammensætning karakteriseret ved en stigning i antallet af leukocytter. Hastigheden af ​​leukocytter i blodet er 3,5-8,8 × 109 / l, men denne indikator kan variere op eller ned afhængigt af laboratoriet og de anvendte metoder.

Leukocytose kan være fysiologisk og patologisk, den første forekommer hos raske mennesker, den anden - med nogle smertefulde tilstande. At bære ernæringsmæssige fysiologiske leukocytose (postprandial), myogene (efter fysisk anstrengelse), leukocytose gravid et al. Patologisk leukocytose reaktion danner organer som følge af irritation forårsaget af infektiøse, toksiske, pyoinflammatory, radiale og andre midler. Det er også observeret i vævsnekrose (myokardieinfarkt, tumor sønderdeling) efter større blødning, skade, traumatisk hjerneskade og andre. Generelt leukocytose forsvinder med dens årsag. Transient leukocytose, karakteriseret ved udseendet i blodet af umodne leukocytter, kaldes en leukemoidreaktion.

Leukopeni er et fald i antallet af leukocytter i blodet i nogle smitsomme og andre sygdomme, såvel som følge af strålingsskader, medicin eller reflekseffekter på knoglemarven.

Strålingsskader, kontakt med en række kemikalier (benzen, arsen, DDT osv.) Fører til leukopeni; tager medicin (cytostatika, nogle typer af antibiotika, sulfonamider osv.). Leukopeni opstår når virale og hårde flydende bakterielle infektioner, sygdomme i blodsystemet.

Når leukopeni er nødvendig for nøjagtigt at bestemme årsagen til sygdommen. Sammen med virusinfektioner og sygdomme i organer krovetvoryaschih forårsage leukopeni kunne være en bivirkning af allopatiske lægemidler som en række lægemidler har toksiske virkninger på knoglemarven og gennem allergiske mekanismer kan forårsage leukopeni og agranulocytose.

Behandlingen består af at ordinere lægemidler, der stimulerer udviklingen af ​​nye leukocytter eller stimulerer frigivelsen af ​​modne hvide blodlegemer.

16. Regulering af leukopoesis:

Regulering af leukopoiesis. Produktionen af ​​leukocytter stimuleres af leukopoetiner, der fremkommer efter hurtig fjernelse af et stort antal leukocytter fra blodet. Den kemiske natur og sted for dannelse i kroppen af ​​leukopoetiner er endnu ikke blevet undersøgt. Nukleinsyrer, vævsforringelsesprodukter, der forekommer under skade og betændelse, og nogle hormoner har en stimulerende effekt på leukopoiesis. Så, under indflydelse af hypofysehormoner - adrenokortikotrop hormon og væksthormon - øges antallet af neutrofiler og antallet af eosinofiler i blodet falder.

Nervesystemet spiller en vigtig rolle i stimuleringen af ​​leukopoiesis. Irritation af sympatiske nerver forårsager en stigning i neutrofile leukocytter i blodet. Langvarig irritation af vagusnerven forårsager omfordeling af leukocytter i blodet: deres indhold øges i blodet i de mesenteriske kar og fald i blodet i perifere fartøjer; irritation og følelsesmæssig agitation øger antallet af leukocytter i blodet. Efter at have spist, øges indholdet af leukocytter i blodet, der cirkulerer i karrene. Under disse betingelser, såvel som under muskulært arbejde og smertefulde stimuli, indtræder leukocytter i milt og bindevævets knogler i blodet.