Leukocytantal i blod

Princip. Tælling af leukocytter under mikroskopi i et bestemt antal kvadrater i tællekammeret og beregning af deres antal i 1 liter blod under hensyntagen til fortynding af blod og tællingens volumen.

Reagens: 3-5% opløsning af eddikesyre, tonet til farvende kerner af leukocytter med et par dråber methylenblåt opløsning. Løsningen har en blå farve, der kan opbevares i lang tid.

Forløbet af beslutsomhed. I et tørt reagensglas hældes 0,4 ml eddikesyreopløsning. 0,02 ml blod samles fra en finger (du kan bruge antikoagulationsstabiliseret venøst ​​blod). Tør tipet af pipetten, blæs derefter blod fra det til bunden af ​​røret, bland det, bland det igen og blæs blandingen af ​​blod og reagens (pipettering). Mærk røret og lad det ligge indtil tællingen. Opbevar en blanding af blod med en opløsning af eddikesyre anbefales ikke mere end 2-4 timer.

Blodet fortyndet i et reagensglas med eddikesyre, blandes grundigt og fyldes med et tællekammer. Det fyldte kammer efterlades i en vandret position i 1 min for at afregne de hvide blodlegemer. Uden at ændre kameraets vandrette stilling placeres den på mikroskopets bord og ved lav forstørrelse (okular 10 ×, linse 8 ×) tæller de hvide blodlegemer i 100 store firkanter, hvilket svarer til 1600 små.

For større nøjagtighed tælles leukocytter over gitteret i store firkanter, ikke opdelt i små firkanter og striber, der starter fra det øverste venstre hjørne af gitteret. For bedre kontrast mørk synsfeltet, slip kondensatoren og luk blænderen. Cellerne placeret inden for firkanten og liggende på to linjer tælles for ikke at tælle samme celle to gange.

Beregningen af ​​antallet af leukocytter udføres ifølge formlen:

hvor X er antallet af leukocytter i 1 μl blod; og - antallet af leukocytter i 100 store firkanter 20 - blodfortynding 100 er antallet af store firkanter; 250 er konverteringsfaktoren pr. 1 μl, da mængden af ​​en stor firkant er 1/250 μl (siden af ​​firkanten er 1/5 mm, højden er 1/10 mm).

I praksis, for at beregne antallet af leukocytter i 1 μl blod, multipliceres deres antal i 100 store kvadrater med 50, og i 1 liter - multipliceres den resulterende værdi med 106.

Bemærk. Ved tælling af leukocytter er en fejl uundgåelig i 6-8% af tilfældene.

  1. Med et stort antal normocytter i perifert blod tælles de i antallet af leukocytter (både leukocytter og normocytter - kernerede celler). For at ordentligt fastslå antallet af leukocytter bør det samlede antal nucleerede blodceller trække antallet af normocytter tilbage.
  2. De resterende fejl svarer til dem, der opstår ved beregning af antallet af røde blodlegemer i tællekammeret.

Leukocyttælling

Tællemetoden i kameraet. Udtagning og fortynding af blod produceret ved rørmetoden. 0,4 ml fortyndingsvæske og 0,02 ml kapillærblod indføres i røret (fortrinsvis Vidalevskaya). Den resulterende fortynding anses praktisk talt for at være 1:20. En 3-5% opløsning af eddikesyre tonet med methylenblåt anvendes sædvanligvis som fortyndingsmiddel (eddikesyre lyses erythrocytter, methylenblå pletter kernerne af leukocytter). Før påfyldning af kammeret Goryaeva rør med fortyndet blod rystes grundigt. Kammeret er fyldt på samme måde som for røde blodlegemer.

Leukocytter er meget mindre end erythrocytter (1-2 pr. Store kvadrat), derfor er der for nøjagtighed foretaget tællinger i 100 store firkanter (ugraderet). Beregning: 100 store firkanter (1600 små) tælles en leukocyt.
Husk at mængden af ​​en lille firkant er 1/4000 mm3, og blodet fortyndes 20 gange, antallet af leukocytter i 1 μl blod beregnes: 4000 20 og divideret med 1600 = a x 1/2. For at opnå det faktiske indhold af leukocytter i 1 μl blod er det tilstrækkeligt at dividere i det halve antal opnået i beregningen og tilføje 2 nuller. Den gennemsnitlige metodefejl er ± 7%.

Mere præcis (2-3% fejl) og perfekt er antallet af leukocytter ved hjælp af elektroniske enheder. Tællingen af ​​leukocytter i partikeltællere udføres ifølge samme princip som erythrocytter. Forblod fortyndes og blandes med eventuelle reagenslysering af røde blodlegemer. I "Technicon" autoanalyseren anvendes en opløsning af eddikesyre som sådan i "Culter" og "Celloskop" -enhederne - saponin eller sapoglobin, der tilsættes fortyndet (1: 500, 1: 700) i isotonisk natriumchloridopløsning (6 dråber pr. 20 ml fortynding).

Blodlegococyttælling udføres i farvede perifere blodudsmidninger.
Det er bedre at tælle på det tyndeste punkt tæt ved smørets ende, mindst 200 celler (undtagen udtalt leukopeni), og derefter udlede procentdelen af ​​visse typer af hvide blodlegemer. Tælling anbefales i samme rækkefølge: Halvdelen af ​​cellerne skal tælles øverst, halvt i bunden af ​​slagtilfælde uden at gå til selve kanten og midt, zigzagging (3-4 synsfelt langs slagtilfælde, 3-4 felter vinkelret på midten af ​​slagtilfælde, derefter 3-4 felter til siden parallelt med kanten, igen vinkelret opad og så videre til den ene side).

Fremstilling af udstrygninger. Nøje vasket og fedtet glas (dens kant) rører en bloddråbe på injektionsstedet. Smøre gør slibeglas, sæt den i en vinkel på 45 ° til glideren foran dråben. Efter at have bragt glasset til denne dråbe, venter de, indtil blodet spredes langs kanten, så med en hurtig let bevægelse udfører de slibeglasset fremad og tager det ikke væk fra motivet, før det tørrer hele dråbet.

Et korrekt smurt har en gullig farve (tynd), når ikke glasets kanter og slutter i et spor (overskæg).

Farvning af tørt smør fremstillet efter foreløbig fixering. Den bedste fiksering opnås i absolut methylenalkohol (3-5 minutter) eller i en blanding af Nikiforov af lige dele af absolut ethanol og ether (30 minutter).

De vigtigste hæmatologiske maling indbefatter methylenblåt og dets derivat - azurblåt I (methylen azurblåt) og azurblå II (en blanding af lige dele azurblå I og methylenblåt) til surt vandopløseligt gult eosin.

● Maleri af Romanovsky-Giemsa. Romanovsky-Giemsa-maling (fabriksfremstillet) har følgende sammensætning: Azur II - 3 g, vandopløselig gul eosin - 0,8 g, methylalkohol - 250 ml og glycerin - 250 ml. Arbejdsmalingopløsningen fremstilles ved en hastighed på 1,5-2 dråber af den færdige maling pr. 1 ml destilleret vand. Malingen hældes på et smear med et højere lag; farvningstid - 30-35 minutter Efter denne periode vaskes vatpindene med vand og tørres i luft. I denne metode er det muligt at differentiere kernen godt, men cytoplasmens neutrofile granularitet er meget værre, så det er meget anvendt til farvning af et perifert blodsprøjt.

● Kombineret maj-Grunwald-Romanovsky-Giemsa farvning ifølge Pappenheim. Et færdigt farvestof, et maj-Grunwald fixativ, som er en opløsning af eosinmethylenblåt i methylenalkohol, pipetteres på et fast smear i 3 minutter. Efter 3 minutter tilsættes en lige stor mængde destilleret vand til maling, der dækker opløsningen, og farvningen fortsættes i yderligere 1 minut. Derefter vaskes malingen, og smøret tørres i luften. Derefter males det tørrede smear med en nylavet vandig opløsning af Romanovsky-maling i 8-15 minutter. Denne metode betragtes som den bedste, især for udtværinger af marv punkt.

En stigning i antallet af leukocytter i det perifere blod over det normale niveau kaldes leukocytose, et fald kaldes leukopeni. Leukocytose (leukopeni) karakteriseres sjældent ved en proportionel stigning (reduktion) i antallet af leukocytter af enhver art, for eksempel leukocytose med fortykkelse af blodet. I de fleste tilfælde er der en stigning i antallet (fald) af en enkelt celletype. Forøgelsen eller faldet i antallet af individuelle typer leukocytter i blodet kan være relativt eller absolut, afhængigt af det totale leukocytantal - normalt, forhøjet eller nedsat. Ændringen i antallet, forholdet mellem individuelle former og morfologi af leukocytter afhænger af patogenens type og virulens, arten, kursen og omfanget af den patologiske proces, den individuelle reaktion af organismen.

Metode til at tælle leukocytter i Goryaev-kammeret

Hvide blodlegemer - hvide blodlegemer - spiller en vigtig rolle i den antimikrobielle beskyttelse af kroppen. Granulocytter phagocytiserer mikrober og ødelægger dem ved hjælp af enzymer indesluttet i granuler; lymfocytter producerer antistoffer og giver immunresponser til kroppen.

Metoden til bestemmelse af testrørmetoden: Hæld i et reagensglas 0,4 ml af en opløsning af Türk (Türk's væske indeholder eddikesyre for at ødelægge røde blodlegemer og methylenblåt til farvningskerner af leukocytter). Brug en kapillærpipette til at trække 0,02 ml blod fra et frisk dråbe, blæs det forsigtigt i et reagensglas med et reagens og skyl pipetten. Bland godt. Samtidig er blodfortyndingen 20 gange. En dråbe fortyndet blod opsamles ved enden af ​​en rund glasstang og påføres på kanten af ​​et poleret glaskammer.

Tællingen udføres i 100 store ubrudte firkanter, sammensat af fire. Brugt en lille stigning.

Afledningen af ​​tælleformel nummer 1.

1. 100 kvadrater indeholder 1600 små firkanter (16x 100)

2. Blodvolumen over lille firkant 1/4000 mm3

3. Fortynding af blod 20 gange

Antal leukocytter i 1 μl blod = ved -4000-20. = Ax 50

For eksempel: 130 leukocytter blev talt i 100 store firkanter af Goryaev-gitteret. I 1 μl blod vil antallet af leukocytter være 130 x 50 = 6500 eller 6,5-10 3.

For at bestemme indholdet af leukocytter i 1 liter blod multipliceres antallet af leukocytter, udtrykt i tusinder, med 10 9.

I vores eksempel er antallet af leukocytter i 1 liter blod 6,5-10 9.

194.48.155.245 © studopedia.ru er ikke forfatteren af ​​de materialer, der er indsendt. Men giver mulighed for fri brug. Er der en ophavsretskrænkelse? Skriv til os | Kontakt os.

Deaktiver adBlock!
og opdater siden (F5)
meget nødvendigt

Leukocytantal i blod

Leukocytose kan være absolut (sand) og relativ (omfordelende).

Absolut leukocytose observeres ved akutte inflammatoriske processer, vævsnekrose, akutte bakterielle infektioner (med undtagelse af tyfusfeber, brucellose, tularemi osv.), Allergiske tilstande, maligne tumorer (med vævsdestruktion), lukkede hovedskader og blødninger i hjernen, diabetes. uræmisk koma, chok, akut blodtab, som den primære reaktion - med strålingssygdom. En signifikant stigning i antallet af leukocytter forekommer med leukæmi.

Relativ (omfordeling) er en konsekvens af kvitteringen af ​​leukocytter i blodgennemstrømningen fra de organer, der tjener til hendes depot. Det opstår efter at have spist (mad leukocytose), varme og kolde bade, stærke følelser (vegetovaskulær leukocytose), intenst muskulært arbejde (myogen leukocytose) osv.

Leukopeni. Leukopeni betragtes som en indikator for hæmning af knoglemarvets funktionelle evne som følge af eksponering for giftige stoffer (arsen, benzen osv.), Nogle lægemidler (sulfanilamider, chloramphenicol, butadion, immuno, cyclophosphamid osv.), Vira (influenza, viral hepatitis, mæslinger osv.), mikrober (tyfus, brucellose osv.), ioniserende stråling, røntgenstråler og hypersplenisme (øget miltfunktion).

Leukocytose og leukopeni karakteriseres sjældent ved en proportionel stigning (reduktion) i det totale antal leukocytter af alle typer (fx leukocytose med fortykkelse af blodet); i de fleste tilfælde er der en forøgelse (fald) i antallet af en enkelt celletype, derfor benyttes termerne "neutrofili", "neutropeni", "lymfocytose", "lymfopeni", "eosinofili", "eosinopeni", "monocytose", "monocytopeni", "Basophilia."

I den kliniske evaluering af ændringer i antallet af leukocytter er stor betydning knyttet til procentforholdet mellem individuelle former for leukocytter, det vil sige leukocytformel.

Leukocyt blodtal for en sund person:

Relativ mængde Absolut mængde

Basofiler............................0-1% 0-0.0650 x 10 9 / l

Eosinophils.........................0.5-5% 0.02-0.30 x 10 9 / l

Neutrofiler: - myelocytter............ 0% fraværende

- stakkede... 1-6% 0,040-0,300 x 10 9 / l

- segmenteret....47-72% 2,0-5,5 x 10 9 / l

Lymfocytter..................................19-37% 1,2-3,0 x 10 9 / L

Monocytter.............................. 3-11% 0,09-0,6 x 10 9 / L

Leukocyttælling udføres i farvede perifere blodudstrygninger. For den korrekte fortolkning af resultaterne af undersøgelsen af ​​leukocytformlen anbefales det at tælle i absolutte mængder, men ikke i relative. De mest almindelige metoder til maleri udsmykning af Romanovsky-Giemsa, Pappenheim. Under nedsænkning tælles mindst 200 celler, og derefter er procentforholdet mellem visse typer leukocytter afledt. Analyse af leukogram under hensyntagen til andre blodparametre og det kliniske billede er en værdifuld undersøgelsesmetode, det hjælper med diagnosticering og bestemmelse af sygdommens prognose.

Hovedårsagerne til neutrofili.

Akutte bakterielle infektioner - lokaliseret og generaliseret.

Inflammation eller nekrose af vævet.

Lægemidler (kortikosteroider).

Hovedårsagerne til neutropeni.

Infektioner - bakteriel (tyfusfeber, brucellose, tularemi, paratyphoid feber) og viral (infektiøs hepatitis, mæslinger, influenza, røde hunde og andre).

Myelotoksiske virkninger og undertrykkelse af granulocytopoiesis (ioniserende stråling; kemiske stoffer - benzen, anilin, DDT; medicinske virkninger - cytostatika og immunosuppressiva; vitamin B12-folsyre-mangelanæmi, akut aleukæmisk leukæmi, aplastisk anæmi).

Antistofeksponering (immune former) - Overfølsomhed overfor lægemidler, autoimmune sygdomme (SLE, reumatoid arthritis, kronisk lymfatisk leukæmi), isoimmune manifestationer (hæmolytisk sygdom hos nyfødte).

Omfordeling og deponering i organer - chokbetingelser, sygdomme med splenomegali og hypersplenisme.

Arvelige former (familiær godartet kronisk neutropeni).

Hovedårsagerne til eosinofili.

Parasitiske invasioner (trichinose).

Kroniske hudlæsioner - psoriasis, pemphigus, eksem.

Tumorer (eosinofile varianter af leukæmi).

Andre sygdomme - fibroplastisk endokarditis Lefflera, skarlagensfeber.

I genoprettelsesfasen af ​​infektioner og inflammatoriske sygdomme (gunstigt prognostisk tegn).

Årsager til eosinopeni (aneosinofili).

Øget adrenokortikosteroid aktivitet i kroppen.

Hovedårsagerne til basophili:

Kronisk myeloid leukæmi og erythremi.

Hovedårsagerne til monocytose.

Subakutte og kroniske bakterielle infektioner.

Parasitiske infektioner - leishmaniasis, malaria.

Hemoblastose - monocytisk leukæmi, lymfogranulomatose, lymfomer.

Andre tilstande er SLE, sarcoidose, rheumatoid arthritis, infektiøs monocytose; i perioden med opsving fra infektioner, når de forlader agranulocytose efter splenektomi.

Faldet i antallet af monocytter er vigtigt først og fremmest ved vurdering af lymfocyt-monocytisk forhold i lungetuberkulose.

Hovedårsagerne til lymfocytose.

Infektioner - akut virus (infektiøs mononukleose, mæslinger, rubella, kyllingepoks), kronisk bakteriel (tuberkulose, syfilis, brucellose), protozoal (toxoplasmose).

Hemoblastose (lymfocytisk leukæmi, lymfom).

Andre sygdomme - hypertyreose, Addison's sygdom, vitamin B12-folisk mangelanæmi, hypo- og aplastisk anæmi.

Lymfocytopeni observeres i SLE, Hodgkins sygdom, udbredt tuberkulose af lymfeknuderne, i den terminale fase af nyresvigt, akut strålingssygdom, immunodeficienttilstande, idet der tages glucocorticoider.

Forøgelsen eller faldet i antallet af visse typer leukocytter i blodet kan være relativt eller absolut. Hvis kun procentdelen af ​​en bestemt type hvide blodlegemer ændres, finder der relativ neutrofili, relativ eosinopeni mv sted. Forøgelse eller reduktion i det absolutte indhold af enhver type af hvide blodlegemer, dvs. antallet af dataceller pr enhed af blodvolumen kaldes absolut neutrofil absolutte eosinopeni etc.

Skiftning af formlen til venstre (forøgelse af antallet af unge former for neutrofiler) er et tegn på betændelse eller en nekrotisk proces i kroppen.

Skiftet af leukocytformlen til højre er karakteristisk for strålingssygdom og vitamin B12-folsyre-mangelanæmi.

Fraværet eller signifikant reduktion i antallet af alle typer granulære leukocytter - granulocytter (neutrofiler, eosinofiler, basofiler) betegnes med betegnelsen agranulocytose. Afhængig af forekomningsmekanismen er myelotoksiske (virkninger af ioniserende stråling, cytostatisk indtagelse) og immun (hapten og autoimmun agranulocytose) kendetegnet.

Leukocytter (leukocytter)

Leukocytter. Kvantitativ bestemmelse af leukocytter. Tælle leukocytter ved hjælp af kameraet Goryaeva. Kvantitativt indhold af leukocytter. Leukocytose.

Hvide blodlegemer

Antallet af leukocytter i blodet afhænger både af deres dannelseshastighed og på deres mobilisering fra knoglemarven såvel som på deres udnyttelse og migration i vævene (til læsionerne), indfangning af lungerne og milten. Disse processer påvirkes igen af ​​en række fysiologiske faktorer, og derfor er antallet af leukocytter i en sund persons blod udsat for udsving: det stiger ved slutningen af ​​dagen under fysisk anstrengelse, følelsesmæssig stress, indtagelse af proteinfødevarer og pludselige ændringer i omgivelsestemperaturen.

Kvantitativ bestemmelse af leukocytter

Leukocytter tælles ved hjælp af Goryaev kameraet og ved hjælp af automatiske tællere.

Tælle leukocytter ved hjælp af kameraet Goryaeva

Med in vitro-metoden til at tage blod for at tælle leukocytter:

  • 0,4 ml af en opløsning af 3-5% eddikesyre tonet med methylenblåt hældes i røret. Brug en kapillærpipette til at tegne 20 μl blod fra en frisk dråbe (fortynding 20 gange), blæk forsigtigt i et reagensglas med et reagens og skyl pipetten. Bland godt
  • et rent og tørt dækglas gnides på kammeret, så regnbue ringe danner ved kontaktpunktet;
  • Blod fortyndet i et reagensglas, bland godt. Enden af ​​en rund glasstang tager en dråbe blod og bringer den til kanten af ​​kammerets polerede glas;
  • efter påfyldning af kammeret står det i 1 minut i ro for sedimentation af leukocytter;
  • Leukocytter betragtes ved lav forstørrelse (objektiv × 8 eller × 9, okular × 10 eller × 15) med mørkere synsfelt (med nedsænket kondensator eller indsnævret membran);
  • Til tilfredsstillende resultater tælles leukocytter i 100 store firkanter.

At vide mængden af ​​et stort firkant og graden af ​​fortynding af blod, find antallet af leukocytter i 1 μl og 1 liter blod. Siden af ​​det store torv er 1/5 mm, området er 1/25 mm2, rumfanget over dette torv er 1/250 mm3.

Formel til tælling af hvide blodlegemer:

hvor B er antallet af leukocytter i 100 store firkanter;
P - fortyndingsgrad (20).

Leukocyttælling

Norm: 4,0-9,0 × 10 9 / L

Forøgelsen af ​​antallet af leukocytter over 9,0 × 10 9 / l kaldes
leukocytose, et fald i deres antal under 4,0 × 10 9 / l - leukopeni. Imidlertid kan endog 3,5 × 10 9 i 1 liter leukocytter til en række individer være normen. Ifølge litteraturen har sådanne mennesker øget immunresistens, og de er mindre tilbøjelige til at blive syge, hvilket tilsyneladende skyldes behovet for et immunrespons at have en reserve af leukocytter i væv, hvor der er 50-60 gange mere end i blodbanen. Det er klart, at hos sunde individer med lave hvide blodlegemer i perifert blod øges deres reserver i væv tilsvarende. Dette fænomen forklares af arvelig og familiær karakter eller ved en stigning i påvirkning af det parasympatiske nervesystem.

Leukopeni kan være funktionelt og organisk.
Funktionel leukopeni er forbundet med dysregulering af bloddannelse og observeres:

  • med nogle bakterielle og virale infektioner (tyfusfeber, influenza, kopper, rubella, Botkin's sygdom, mæslinger);
  • under virkningen af ​​stoffer (sulfonamider, analgetika, antikonvulsiva midler, antithyroid, cytostatiske og andre lægemidler);
  • under muskulært arbejde, introduktion af fremmed protein, nerve- og temperatureffekter, sult, hypotoniske tilstande;
  • falsk leukocytopeni kan være associeret med leukocytaggregering under langtidsopbevaring af blod ved stuetemperatur (mere end 4 timer).

Organisk leukopeni som følge af knoglemarv aplasi og dens udskiftning med fedtvæv opstår når:

  • aplastisk anæmi;
  • agranulocytose;
  • leukopenisk leukæmi;
  • nogle former for Hodgkins sygdom;
  • ioniserende stråling;
  • hypersplenisme (primær og sekundær);
  • kollagen sygdomme.

leukocytose

Leukocytose er reaktionen af ​​det hæmatopoietiske system til virkningerne
eksogene og endogene faktorer. Der er fysiologisk og patologisk leukocytose.

Fysiologisk leukocytose er:

  • fordøjelsesvæske - efter at have spist, især højt i protein; antallet af leukocytter overstiger ikke 10,0-12,0 × 10 9 / l og efter 3-4 timer vender det tilbage til det normale;
  • med følelsesmæssig stress (adrenalin), alvorlig fysisk anstrengelse, afkøling, for høj solstråling (solskoldning), administration af et antal hormoner (catecholaminer, glukokortikosteroider osv.) i anden halvdel af graviditeten under menstruation og på grund af den ujævn fordeling af leukocytter i blodet den almindelige.

Patologisk leukocytose er opdelt i absolutte og relative.

Absolut leukocytose - en stigning i antallet af leukocytter i blodet op til flere hundrede tusinde (100,0-600,0 × 10 9 / l og mere).

  • Oftest observeret i leukæmi: i kronisk leukæmi - i 98-100% af tilfældene i akut leukæmi - i 50-60%. Ændring af forholdet mellem leukocytceller i knoglemarv og blodpunkta tjener som grundlag for diagnosen leukæmi.

Relativ leukocytose observeres:

  • akutte inflammatoriske og infektiøse processer, med undtagelse af tyfusfeber, influenza, kopper, rubella, Botkin's sygdom, mæslinger. Den største leukocytose (op til 70,0-80,0 × 10 9 / l) observeres i sepsis;
  • under påvirkning af giftige stoffer (insektgift, endotoksiner), ioniserende stråling (umiddelbart efter bestråling);
  • som følge af virkningen af ​​kortikosteroider, adrenalin, histamin, acetylcholin og digitalispræparater;
  • med vævsdestintration (nekrose), myokardieinfarkt, trombose af perifere arterier med udvikling af gangren, forbrændinger, exudativ pleurisy, perikarditis, uremi, hepatisk koma;
  • signifikant blodtab i skader, indre, gynækologiske og andre blødninger.

Forøgelsen af ​​antallet af leukocytter i infektionssygdomme ledsages i de fleste tilfælde af et skift af leukocytformlen til venstre

Leukocyttælling og leukocyttælling.

For at tælle leukocytter spredes blod i blandere eller i reagensglas. Til dette formål skal du bruge 3-5% opløsning af eddikesyre (til destruktion af røde blodlegemer), tonet med et hvilket som helst anilinfarvestof (til farvning af kerner af leukocytter). Tællegitteret er fyldt på samme måde som for tælling af røde blodlegemer. Leukocytter tælles i 100 store firkanter. I Goryaev-nettet er det praktisk at tælle dem i ubrudte firkanter (der er 100 af dem på gitteret). I betragtning af fortyndingen af ​​blod og væskevolumenet over kvadraterne beregnes en konstant multiplikator. Ved avl 20 gange er det 50.

Når man arbejder med reagensglas, forhælder de 0,38 ml væske i dem og frigiver 0,02 ml blod ind i det. For at beregne den automatiske optælling i reagensglas, røde blodlegemer hemolyze med saponin. Det normale antal hvide blodlegemer er 4,3 • 10 9 -11,3 • 10 9 / l eller 4300-11 300 i 1 μl blod.

Leukocyttælling talt i farvede udstrygninger.

Et godt udseende opfylder følgende krav: det er tyndt, og de formede elementer ligger i det i et lag; i dette tilfælde er smeden gul og gennemskinnelig. Et godt udtværn er ensartet, og cellerne beskadiges ikke af smøring. For at blodet skal ligge jævnt på glasset, bliver det affedtet ved at brænde en gasbrænder over flammen eller opbevares i en blanding af alkohol og ether. Ved glasets ende berører de den nyligt udgivne lille bloddråbe og spredes det straks på glasset. Før farvning fastgøres smøre ved nedsænkning i methanol i 3 minutter, i ethanol eller dens blanding med ether i 30 minutter. Der er en række andre fixere. Vokspinden tørret efter fiksering er fyldt med farvestof.

At skelne blodceller (definitioner af leukocytformel) udvej til differentiel farvning. Den mest anvendte farvning af Romanovsky-Giemsa. Dette farvestof er en blanding af svagt syre (eosin) og svagt alkaliske (azurblå II) maling. Celler og deres dele, afhængigt af mediumets reaktion, opfatter en eller anden bestanddel af farvestoffet i dem: sure (basofile) stoffer er farvet azurblåt, alkalisk (oxyfilt) farvet eosinrødt; Neutral opfatter begge farver og bliver lilla.

Leukocytformel refererer til procentdelen af ​​individuelle former for blodleukocytter.

NB! For en tilstrækkelig præcis beregning er det nødvendigt at se mindst 200 hvide blodlegemer.

Tælling er lavet med et nedsænkningssystem. Eftersom cellerne er placeret i et smear ujævnt (større udvide til kanterne), er det vigtigt at tage disse ordninger bevægelse smear, hvor ligeledes ses sine kanter og midten. En af de to bevægelsesmetoder anvendes: en af ​​dem bevæger slagtilfælde fra den øverste kant til bunden, bevæger den 2 til 3 synsfelter langs kanten og går derefter i modsat retning til den øvre kant osv. I den anden metode flytter de fra kanten med 5 -6 felter i midten af ​​et slagtilfælde, så flyttes den samme mængde sidelæns, så tilbage til kanten, adskillige felter sidelæns og gentag bevægelsen igen, indtil 50 celler tælles. Se 4 af disse steder ved de fire hjørner af smøret. Tælles 200 celler, tallet er delt i halvdelen og bestemmer antallet af hver type hvide blodlegemer.

Leukocytter er elementer i blodet, der hurtigt reagerer på forskellige ydre påvirkninger og forandringer i kroppen. Bestemmelsen af ​​det totale antal leukocytter kan have stor diagnostisk værdi, da det afslører tilstanden af ​​de bloddannende organer eller deres reaktion på skadelige virkninger. Stigningen i antallet af leukocytter - leukocytose - er resultatet af aktivering af leukopoiesis, et fald i deres antal - leukopeni - kan afhænge af inhiberingen af ​​de bloddannende organer, deres udtømning og den øgede nedbrydning af leukocytter under virkningen af ​​anti-leukocytantistoffer 1. Neutrofiler. Den mest variable gruppe af leukocytter er neutrofiler, hvoraf antallet stiger med mange infektioner, forgiftninger og nedbrydning af væv.

Karakteristisk for aktiv neutroposese er ikke kun en stigning i det totale antal neutrofiler i blodet, men også udseendet af umodne former i det: antallet af stabile celler øges, unge neutrofile forekommer, nogle gange endda myelocytter. Denne "foryngelse" af den neutrofile sammensætning kaldes leukocytskiftet til venstre. Den beskyttende rolle af neutrofiler er bestemt af deres fagocyterende funktion, baktericid virkning og frigivelse af proteolytiske enzymer, der fremmer resorption af nekrotisk væv og sårheling.

Oftest forekommer et regenerativt skift i nærvær af enhver inflammatorisk proces eller et fokus på nekrose. En meget skarp venstre skift til promyelocytter og selv myeloblaster med signifikant leukocytose kaldes leukemoidreaktionen. Faldet i antallet af neutrophiler - absolut neutropeni - opstår, når knoglemarv hæmmer eksponeringen for toksiner fra nogle mikroorganismer (forårsagende midler af tyfusfeber, brucellose osv.) Og vira, ioniserende stråling, en række lægemidler.

2. lymfocytter Lymfocytose observeres i perioden med opsving fra akutte infektionssygdomme med infektiøs mononukleose, infektiøs lymfocytose, lymfocytisk leukæmi, røde hunde, brucellose, thyrotoksicose.

Absolut lymfopeni forekommer i strålingssygdom, systemiske læsioner af lymfesystemet: lymfom, lymfosarcoma.

3. Eosinophils. De findes i blodet i relativt små mængder (findes hovedsageligt i væv), men deres antal stiger, undertiden signifikant, i allergiske processer (serumsygdom, bronchial astma), helminthic invasioner og pruritiske dermatoser.

Et fald i antallet af eosinofiler - eosinopeni - op til deres fuldstændige forsvinden ses i sepsis, alvorlige former for tuberkulose, tyfus og alvorlig forgiftning.

4. Basofiler. Er bærere af vigtige mediatorer af vævsmetabolisme (blod "ækvivalenter" af fedtvævsceller). Når en organisme er sensibiliseret, stiger deres antal, og når allergenet genintroduceres, falder det kraftigt som følge af deres sammenbrud.

5. Monocytter. Stigningen i antallet af monocytter - monocytose - er en indikator for udviklingen af ​​immune processer. Monocytter genkendes som analoger af vævsmakrofager. Monocyt findes i en række kroniske sygdomme (kronosepsis, tuberkulose, syfilis). Monocytopeni observeres undertiden i alvorlige septiske hypertoksiske former for tyfusfeber.

Agranulocytes. Et særpræg ved agranulocytter er den ikke-segmenterede kerne og den basofile (blå) cytoplasma.

Lymfocyt er den mindste leukocyt i størrelse. Kernen er rund, oval eller bønformet; indtager det meste af cellen, stærkt farvet. Cytoplasma af de fleste lymfocytter med en smal rand omgiver kernen, er farvet i en lyseblå farve og afklares til kernen.

Monocyt er den største af blodcellerne. Stor kerne af uregelmæssig form og relativt lys farve. Cytoplasma er en grå-blå, røget farve, er ikke afklaret til kernen

Ud over disse celler er det sjældent i normalt blod, og plasmaceller kan ofte forekomme i sygdomme. De kendetegnes af en excentrisk placeret tæt kerne, ofte med en hjullignende struktur. Antallet af disse celler stiger med visse infektionssygdomme, sår sepsis og multiple myelom.

Ved beregning af leukocytformlen er opmærksomheden ikke kun opmærksom på kvantitative forskydninger i den, men også til kvalitative ændringer i formelementerne. Tidligere blev degenerative ændringer i leukocytter noteret. Ved alvorlig forgiftning bliver neutrofile granulariteten rigelig, stor, intensfarvet og kaldes giftig (eller toksogen). Nogle gange findes blodudslip i blodudsmid, malet som det nukleare stof i leukocytter. Denne såkaldte skygge Botkin, kurv celler - resterne af den nukleare kromatin, hvilket indikerer den øgede skrøbelighed af hvide blodlegemer, hvilket fører til deres opløsning - leykotsitolizu

99. Metoder til bestemmelse af blodgruppen, begrebet Rh-faktor.

1. Bestemmelse af blodgruppe ved standard sera:

Følgende udstyr er påkrævet:

o to sæt standardhemagglutineringssera I (0), II (A), III (B) grupper af to forskellige serier og et hætteglas med serum IV (AB)

o flaske med isotonisk opløsning af natriumchlorid med pipette

o ren vasket tørplade

o glasskinner

o sterile spydnåle til punktering af fingerens kød

o sterile gaze bolde

Standard sera til bestemmelse af blodgruppe ifølge ABO-systemet fremstilles med en specifik farvemærkning.: I (0) - farveløs, II (A) - blå, III (B) - rød, IV (AB) - gul. Serum opbevaret ved 4-10 ° C. Serum skal være lys og gennemsigtig. Tilstedeværelsen af ​​flager, sediment, turbiditet er tegn på serum uegnethed. De første tegn på agglutination bør forekomme senest 30 sekunder.

Pladen er opdelt i 4 firkanter med en farvet blyant og i urets retning betegnes firkanterne I (0), II (A), III (B). En stor dråbe serum i to serier I (0), II (A), W (B) grupper sættes i den tilsvarende plade af pladen med en pipette. Fingerpladen behandles med alkohol, og en nål er punkteret i huden. Den første dråbe blod fjernes med en gasbind, de efterfølgende dråber i forskellige dele af diaset påføres successivt til dråberne af serum og omrøres grundigt. En dråbe blod skal være 5-10 gange mindre end en dråbe serum. Derefter blandes pladen grundigt med blodet med serum. Foreløbige resultater evalueres efter 3 minutter, derefter tilsat dråbe isotonisk natriumchloridopløsning, blandes igen ved at rokke pladerne og efter 5 min endelige evaluering foretaget agglutineringsreaktion.

Med en positiv isohemagglutinationstest afviger ikke flagerne og kernerne fra de klæbte røde blodlegemer, når der tilsættes en isotonisk opløsning af natriumchlorid og omrøring.

Når en negativ reaktion falder af serum på en plade gennemsigtig, jævnt lyserød, indeholder ikke flager og korn.

Følgende 4 kombinationer af agglutineringsreaktioner med standardsera fra I (0), II (A), III (B) -grupperne er mulige.

v Alle 3 sera i begge serier agglutinerer ikke. Blodprøve -

Jeg gruppe.

v Isohemagglutineringsreaktionen negativ med serum P (A) -grupper i begge serier og positive med serum I (0) og III (B) grupper. Blodprøve -

II (A) -gruppe.

v Isohemagglutineringsreaktionen er negativ med serum fra III (B) -gruppen i både serier og positive med serum fra I (0) og II (A) -grupperne. Blodprøve -

III (B) -gruppe.

v Serum I (0), II (A), III (B) -grupper giver en positiv reaktion i begge serier. Blod tilhører IV (AB) gruppen. Men inden der gives en sådan konklusion er det nødvendigt at udføre en isohemagglutineringsreaktion med standard serum IV (AB) gruppe ved anvendelse af samme procedure. En negativ isohemagglutinationstest muliggør endelig at tildele testblod til IV (AB) -gruppen.

2. Begrebet Rh-faktor.

Et andet antigen (agglutinogen) blev fundet i erythrocytterne, som blev kaldt Rh-faktoren. Alle mennesker er opdelt i personer med Rh-positive (Rh +) og Rh-negative (Rh) blod. Det blev konstateret, at 85% af befolkningen i de røde blodlegemer, der indeholder Rh faktor, t. E. blod fra dem er Rh-positiv, og 15% af det er ikke indeholdt, dvs.. E. Blodet af disse mennesker har Rh-negativ. Til Rh-faktoren (Rh-antigen) er der normalt ingen anti-Rh-agglutinin (færdige antistoffer) i blodet. Sådanne antistoffer optræder kun i blodserum som følge af immunisering af en person med Rh-negativt blod med Rh-positive erytrocytter. En sådan immunisering forekommer på grund af gentagne transfusioner af Rh-positivt blod til en Rh-negativ modtager eller under graviditet af en kvinde med Rh-negativt Rh-positivt blod. Immuniseret på denne måde bliver folk følsomme: Når de transficeres med Rh-positivt blod, udvikles en alvorlig komplikation - et blodtransfusionschok.

Tælling af antallet af leukocytter og blodplader

Faktorer der påvirker rigtigheden af ​​undersøgelsen af ​​hvide blodlegemer

- lang opbevaring af blod ved stuetemperatur

Norm af indholdet af leukocytter i blodet

Alder Antal leukocytter

- 1 dag 11,6 - 22,0

- 1 uge 8,1.- 14,3

- 1 måned 7,6 - 12,4

- Voksne 4,0 - 9,0

Metoder til bestemmelse af antallet af leukocytter i blodet.

- Tæller antallet af leukocytter i tællekammeret

- Tælle leukocytter i hæmatologiske analysatorer

Bestemmelse af antallet af leukocytter i tællekammeret.

- Tælling af leukocytter under et mikroskop udføres efter lysering af røde blodlegemer i 100 store kvadrater i tællegitteret og genberegnes for 1 liter blod baseret på volumenet af kvadrater og fortynding af blod. Tællingen af ​​leukocytter bør foretages inden for 2-4 timer efter blodindsamling.

- Hvis der er nucleerede røde celler i det perifere blod, lyseres de ikke og tælles sammen med leukocytter. I dette tilfælde trækkes antallet af celler i den røde række for at bestemme det sande antal leukocytter fra det samlede antal tællede celler.

- For eksempel: Det samlede antal leukocytter i beregningen i kammeret (eller analysatoren) -45x109 / l. Ved beregning af leukocytformlen blev det konstateret, at 50 erythroblaster (normoblaster) er til stede pr. 100 leukocytter.

Vi beregner det ægte antal leukocytter i blodet:

150 celler - 45 x 109 / l

100 celler (leukocytter) - X

X = 100 * 45 * 10/1/150 = 30 * 10 / l

Således er det sande antal leukocytter i blodet 30 x 109 / l.

De vigtigste kilder til fejl ved beregningen af ​​leukocytter i kammeret:

- Forkert forhold mellem blod og eddikesyre volumener taget i et reagensglas.

- Forkert forberedt opløsning af eddikesyre (i en koncentration på mere end 5% kan nogle leukocytter lyse, hvilket vil føre til en undervurdering af resultatet).

- Langvarig eksponering af prøven ved temperaturer over 28 ° C, som kan accelerere lysis af leukocytter i prøven og føre til en undervurdering af resultatet.

- Forkert udfyldning af Goryaev-kammeret. Som med beregningen af ​​røde blodlegemer skal kameraet stå i 1 minut for at afregne cellerne.

- Goryaev-kameraet blev ikke vasket godt nok efter den foregående definition. Leukocytter tilbage i kammeret kan overvurdere resultaterne af analysen.

Blodplade tæller metoder

- i tællekammeret

Hver gruppe af metoder har fordele og ulemper.

- Tællingen af ​​blodplader i kammeret er tilstrækkeligt nøjagtig, kræver ikke at beregne antallet af røde blodlegemer. På den anden side er denne metode mere arbejdskrævende, da blodpladerne i den native form er repræsenteret af små og dårligt kontrastelementer. Ulempen ved fremgangsmåden er blodpladetælling i de kommende timer efter at have taget blod.

- Bestemmelse af antallet af blodplader i blodudsmid er signifikant ringere i nøjagtigheden af ​​kammermetoden eller automatiske tællere. Fejl ved tælling i blodudslip kan skyldes svag dårlige kvalitet og den dermed forbundne ujævn fordeling af blodplader, unøjagtig bestemmelse af antallet af røde blodlegemer. En signifikant ulempe ved fremgangsmåden er nødvendigheden af ​​samtidig at telle blodplader og røde blodlegemer i blodet. Fordelen ved det er evnen til at studere blodplader til enhver tid uanset tidspunktet for blodindsamling.

- Metoden til bestemmelse af blodplader ved hjælp af en hæmatologisk analysator giver dig mulighed for nøjagtigt at bestemme antallet af blodplader, deres gennemsnitlige volumen og volumenfordeling.

Unified metode til at tælle antallet af blodleukocytter i tællekammeret;

Metoder til at tælle antallet af leukocytter i blodet

Unified 2 metoder til bestemmelse af antallet af leukocytter i blodet:

- i tællekammeret;

- ved hjælp af hæmatologiske analysatorer.

Princippet Leukocytter tælles under et mikroskop i et bestemt volumen af ​​tællekammeret med konstant fortynding af blod efter ødelæggelsen af ​​røde blodlegemer.

Reagens: 3-5% opløsning af eddikesyre, tonet med en vandig opløsning af methylenblåt til farvning leukocytkerner og lette deres tælling. Løsningen er blåfarve, stabil i opbevaring.

Specielt udstyr: mikroskop, tællerammer Goryaeva.

Forløbet af beslutsomhed. Ved hjælp af en målepipette eller en automatisk dispenser hældes præcis 0,4 ml eddikesyreopløsning i agglutinationstestrøret, og der tilsættes 0,02 ml (sali kapillær) blod. Vask kapillæren flere gange med en syreopløsning, og bland rørets indhold. Dette resulterer i en fortynding af blod 20 gange. Lad være til tælling, men ikke mere end 2-4 timer efter blodprøveudtagning. Goryaev-kammeret er forberedt på arbejde ved at tørre et dækglas, så regnbue ringe vises. Skud igen indholdet af røret grundigt og fyld Goryaev kammeret med denne blanding ved hjælp af en Pasteur pipette eller en glasstang med smeltet ende. Lad det fyldte tællekammer stå i 1 minut i en vandret position for leukocyt-sedimentering. Leukocytter tælles i 100 store ikke-graderede kvadrater i tællekammeret under betingelserne: kondensatoren sænkes, okularet 10x eller 15x, linse 8x. Tællingen starter fra det øverste venstre hjørne af Goryaev-kameraets net. Når de tæller leukocytter, følger de reglen: Alle celler inde i firkanten og på afgrænsningslinjerne tælles, hvis de for det meste går ind på pladsen. Celler krydset af en skillelinie nøjagtigt i halvdelen, tælles kun på to sider af en firkant (for eksempel venstre og øverste).

Beregning. Ved beregning af antallet af leukocytter i 1 μl blod, brug formlen:

- antallet af leukocytter i 1mkl blod;

a - antallet af leukocytter beregnet i 100 store firkanter

4000 - volumenomregningsfaktor til 1 μl, baseret på volumenet af den lille firkant, som er μl;

1600 - antallet af tælles små firkanter;

20 - blodfortynding.

For at konvertere antallet af leukocytter i SI-enheder (i 1 l blod) multipliceres det resulterende tal med 10 6.

Praktisk set til bestemmelse af indholdet af leukocytter i 1 liter blod multipliceres antallet af leukocytter beregnet i 100 store kvadrater i tællekammeret med 50 divideret med 1000 (det vil sige overført til et komma med 3 tegn til venstre) og multipliceret med 10 9.

Metoder til at tælle leukocytter i Goryaev-kammeret, normer for indikatorer og afvigelser

Goryaev-kammeret er en anordning til måling af antallet af celler og partikler i et bestemt volumen væske (blod, urin), der består af en særlig tyk genstand og dækglas.

Et glasglass har et forsænket område i midten, hvorpå der anbringes et gitter på 225 store firkanter. Af disse firkanter er 25 fordelt jævnt i 16 mindre firkanter. På grund af dette netvolumen udføres beregningen mere præcist end i andre håndholdte tællere.

Kamera service

Efter brug af instrumentet desinficeres diaset ved nedsænkning i en 4% formalinopløsning i en time eller i en 70% ethanolopløsning i en halv time. Derefter vaskes kammeret grundigt med destilleret vand. Overskydende væske fjernes med en blød klud. Det er værd at være opmærksom på, at kameraet ikke kan tørres med en bomuldspinne på grund af, at fibrene klæber til det. Opbevaret glas på et tørt sted.

Under brug af kameraet beregnes PE'er, der er placeret inde i gitterpladet og på de øverste og venstre linjer af dets omkreds. I dette tilfælde er partiklerne, der berører den højre og nederste linje af omkredsen under beregningen af ​​denne celle, ikke medtaget.

Bestemmelse af leukocytter i blodet

Metode til at tælle leukocytter

Beregningen af ​​antallet af leukocytter begynder med fortynding af blod i en 3-5% opløsning af ethansyre med methylblåt 20 gange. Arbejdsmateriale inden brug tørres med gasbind.

Coverglas skal tørres før Newtons farvede ringe udseende. Dernæst fyldes kammeret med fortyndet blod, mens de første to dråber frigives på filterpapir. Væsken kommer ind i kammeret på grund af vandets kapillære egenskab. Det er vigtigt at sikre, at intet strømmer ind i sporene, når de fylder. Hvis dette sker, fjernes væsken forsigtigt med filterpapir. Løft derefter gitteret alene i et øjeblik, og vent på FE'en for at stoppe bevægelsen.

Antallet af hvide blodlegemer udføres inden for hundrede store firkanter med lav forstørrelse, det vil sige med et okular på 10x og et mål 8x ifølge Egorovs regel. Det resulterende tal anvendes i formlen.

X = (n × 250 × 20) / 100 eller X = n × 50

X - antallet af leukocytter.

n er nummeret opnået ved at tælle i kammeret.

Antallet af leukocytter bestemmes under hensyntagen til antallet af store kvadrater i nettet - 100 og fortyndingen af ​​blodet - 20.

Hvordan er antallet af leukocytter

Leukocytrate og abnormiteter

Leukocytraten hos mennesker er 4,0 - 9,0 × 10 9 / l. Eller forskelligt er ca. 6.000 hvide blodlegemer placeret i 1 kubikmeter blod.

Eksterne fysiologiske faktorer kan påvirke afvigelser fra normen:

  • fødeindtag før bloddonation
  • stress;
  • graviditet eller menstruation hos kvinder
  • hypotermi eller overophedning;
  • stor fysisk anstrengelse før testning.

Hvis antallet af hvide blodlegemer overstiger 9,0 × 10 9 / l (leukocytter er forhøjet), kaldes denne tilstand leukocytose. Et lignende billede kan ses med maligne blodsygdomme, infektioner, strålingsskader og forgiftning.

Lægemidler kan også øge antallet af leukocytter. Nekrose af væv, kraftig blødning, herunder som følge af operationer, nyre koma, hjertesygdom - alt dette kan føre til leukocytose.

Faldet i antallet af leukocytter under 3,9 × 10 9 / l kaldes leukopeni. I nogle mennesker er et fast antal leukocytter imidlertid fastsat til 3,5 × 10 9 / l. Det menes, at sådanne mennesker opretholder en reserve af disse celler i vævene 50 gange mere end i blodet. Der er også funktionel leukopeni efter administration af smertestillende midler, sulfonamider og andre lægemidler, efter lang muskelarbejde, som følge af infektion og vira (tyfus, influenza og mæslinger).

Leukocytformel

Alle typer leukocytter udgør leukocytformel. På den kan du identificere visse patologier. Formlenes normer varierer med alder og perioder af en persons liv. Skiftet er tydeligt synligt hos kvinder under graviditet eller efter fødslen.

Forskellige metoder bruges til at beregne forholdet mellem typerne af disse celler, men de er alle relateret til det faktum, at de tungere celler (f.eks. Basofiler) er placeret tættere på smørets kant, og lymfocytterne, som lysceller, forbliver i midten.

  • Filipchenko metode. Ved denne metode udføres beregningen langs den tværgående lige linje af grænsen fra den ene ende til den anden. Stroppen er mentalt opdelt i tre dele.
  • Schilling metode. Leukocytter tælles i fire områder af et smear.

De opnåede data registreres i tabellen. Individuelt beregnes antallet af hver type hvide blodlegemer med formlerne. Markerede de elementer, der kom til syne. Resultatet holdes indtil øjeblikket, indtil summen af ​​alle talte celler er 100.

Metoder til at tælle leukocytter i urinen

I urinen beregnes antallet af leukocytter i cellen Goryaeva Nechiporenko. Denne analyse er nødvendig for at overvåge nyresygdom. Periodisk undersøgelse af urin hjælper med at overvåge rigtigheden af ​​behandlingen og effektiviteten af ​​den foreskrevne behandling.

Urinopsamling

I undersøgelsen er kun den første morgen urin midt i vandladningen. Det er vigtigt for patienten at følge de grundlæggende regler for indsamling af dette biomateriale. Særlig supplerende uddannelse til studiet er ikke påkrævet.

Beregningsmetode

10 ml friskindsamlet urin centrifugeres i tre minutter ved 2,5 tusind omdrejninger pr. Minut. Før dette er det nødvendigt at sikre, at urinen har en svag syrereaktion for at undgå delvis nedbrydning af cellerne.

Brug en pipette med en smal, trukket ende, fjern det øverste lag. In vitro forlader fra 0,5 ml urin til 1 ml, afhængigt af mængden af ​​sediment.

Bundfaldet blandes forsigtigt med supernatanten. Den resulterende opløsning anvendes til at fylde Goryaev-tællekammeret ifølge et lignende princip, som anvendes ved beregning af blodets PV. Kameraet står alene i 3 til 5 minutter.

Hvide blodlegemer skal tælles i store firkanter over hele gitteret med en 7x okular og en 40x linse.

Det resulterende tal anvendes i formlen:

X = (a / 0,9) × (1000 / V)

X - antallet af leukocytter i 1 ml urin.

a - den beregnede mængde divideret med kammerets volumen i 1 μl urinsediment.

v - mængden af ​​urin taget til undersøgelsen

1000 - mængden af ​​sediment.

Dette er vigtigt! Leukocytnorm: i 1 ml urin ikke mere end 2 × 10 3 hvide blodlegemer.

Leukocytantal i blod

Laboratoriepersonale til at opdage blodtællinger af leukocytter bruger oftest Goryaev-kammeret. Tællingen af ​​leukocytter i Goryaev-kammeret er en mindre nøjagtig metode end bestemmelsen af ​​leukocytter ved anvendelse af elektroniske enheder. Fejlens størrelse er ± 7%.

Hvordan er tællingen færdig

  1. I røret hældes 0,4 milliliter af fortyndingsvæsken såvel som 0,02 milliliter kapillærblod. Klaravl anses for at være lig med 1:20.
  2. Som fortyndingsvæske anvendes sædvanligvis en 3 eller 5% opløsning af eddikesyre. Det er prætonet med methylenblåt, som ved reaktion farver kernerne i leukocytter.
  3. Før du fylder kammeret, rystes Goryaev-røret så grundigt som muligt. Fyldning af kameraet er det samme som for tællingen af ​​røde blodlegemer.

Beregningsfunktioner

Med antallet af leukocytter betydeligt lavere end de røde blodlegemer, er det af denne grund, at beregningen er lavet i 100 store firkanter. I 100 kvadrater blev et leukocyttal beregnet.

Med et volumen på et lille firkant på 14.000 kubikmeter og en 20 gange blodfortynding beregnes antallet af leukocytter som følger: 4000x20 og derefter divideret med 1600. Det viser sig 1/2 x a.

For at få et antal hvide blodlegemer i 1 μl, skal den beregnede figur divideres med 2 og tilføje to mere nuller.

Afvigelse af leukocytter fra niveauet indikerer leukocytose og leukopeni og kræver øjeblikkelig detaljeret undersøgelse, da der er stor sandsynlighed for forekomsten af ​​tuberkulose, lungebetændelse, sepsis, tyfusfeber, strålingssygdom.